2. Фізична антисептика Фізичним методом вважається вплив на рану ультрафіолетового спектру випромінювання, що надає бактерицидну дію на область рани.

3. Хімічна антисептика Хімічні методи антисептики представлені різноманітними хімічними речовинами, що згубно діють на зростання та розмноження бактерій. До таких речовин відносяться, наприклад, сульфаніламідні препарати. Широко поширене в гнійний

4. Біологічна антисептика Біологічні методи антисептики – нині найширша ефективна група антисептичних методів. Це і антибіотики – хімічні препарати, що впливають бактерицидно та бактеріостатично, причому в даний час акцент

12.3.12. РОЗЧИН АНТИСЕПТИКА ДЛЯ ОЧЕЙ Антисептичні властивості мають антибіотики, сульфаніламідні препарати, дезінфікуючі засоби, що вже згадувалися нами раніше 12.3.2.Антисептичні розчини у вигляді очних крапель застосовуються для профілактики бактеріального

Ігнатій Земмельвейс (Угорщина, 1818–1865) Асептика при пологах* Доктор Земмельвейс був призначений у 1846 році доктором-акушером у клініці загальнодоступної лікарні у Відні. Першого місяця роботи Земмельвейса в клініці з двохсот породіль померли тридцять шість. Земмельвейс жахнувся.

Але не хотілося б, щоб у читача склалося враження, що втручання медицини тільки зіпсувало пологову допомогу. Рухові гарячою любов'ю до жінки, лікарі-чоловіки у всі віки щиро бажали полегшити

Асептикакомплекс заходів, спрямованих на запобігання потраплянню збудників інфекції в рану чи організм людини.

Антисептика- Комплекс заходів, спрямованих на боротьбу з інфекцією в організмі людини, попередження або ліквідацію інфекційного запального процесу.

АСЕПТИКА

Препарати, які мають антибактеріальну дію на гнійну мікрофлору, ділять на дві групи - хіміотерапевтичні засоби (див. Антисептика)та хімічні засоби для дезінфекції та стерилізації.

Препарати, що застосовуються для дезінфекції та стерилізації, використовують для запобігання потраплянню інфекції в рану, тобто. боротьби з інфекцією шляхах її передачі. Деякі хімічні антибактеріальні засоби можуть застосовуватися як хіміотерапевтичні, так і засоби для дезінфекції та стерилізації (наприклад, хлоргексидин, водню пероксид та ін.).

З хімічних засобів для дезінфекції та стерилізації широко використовують у хірургії препарати йоду: 5% і 10% спиртовий розчин застосовують для змащування шкіри навколо рани, обробки поверхневих ран та саден, операційного поля.

Йод+калію йодидмістить близько 4,5% вільного йоду, перед вживанням розводять дистильованою водою у співвідношенні 1:4,5. Препарат застосовують для обробки операційного поля.

Повідон-йодз'єднання йоду з полівінілпіролідоном, що містить 0,1-1% йоду. Використовують для обробки рук операційного поля.

Хлорамін Б (Chloraminum)використовують у вигляді (1-3%) розчину для дезінфекції рук, предметів догляду за хворими, неметалічних інструментів, приміщень.

Надмурашина кислотау комплексі з пероксидом водню (первомур, препарат С-4) призначений для обробки рук перед операцією. Готують спеціальний розчин (див. Підготовка рук до операції.Препарат застосовують також для обробки хірургічних інструментів та гумових рукавичок.

Етанол (Spiritus aethylicus)використовують у вигляді 70% чи 96% розчину для обробки рук, операційного поля, оптичних інструментів, шовного матеріалу.

Формалін (Formalinum) -розчин, що містить 365-375% формальдегіду. Застосовують як 0,5-5% розчину для дезінфекції рукавичок, інструментів, катетерів, дренажів.

Дегміцид (Degmicidum)містить 30% дегміну (четвертичне амонієве з'єднання). Застосовують 1% розчин (тобто у розведенні 1:30) для обробки операційного поля та рук хірурга.

Бензалконію хлориду вигляді 1% або 10% розчину застосовують для стерилізації інструментів (у розведенні 1:1000; експозиція - 30 хв), гумових рукавичок, дренажів (у розведенні 1:4000; експозиція - 24 год). З метою попередження корозії інструментів додають карбонат натрію з розрахунку 2 г на 1 л робочого розчину.

Хлоргексидинвипускається у вигляді біглюконату (Chlorhexidini bigluconas).Синонім – гібітан. Випускається у вигляді 20% розчину. Для обробки операційного поля та дезінфекції інструментів розчин розводять 70% розчином етанолу щодо 1:40. Отриманим 0,5% водно-спиртовим розчином обробляють операційне поле 2 рази з інтервалом 2 хв. Інструменти стерилізують шляхом занурення їх у розчин на 2 хв.

Із сучасних засобів для дезінфекції та передстерилізаційної підготовки використовують «Аламінол» (Росія). Чинний початок становлять 5% розчин алкілдиметилбензиламоній хлорид і 8% розчин гліоксалу, а також поверхнево-активна речовина, рН 3,5. Має широку бактерицидну дію по відношенню до неспецифічної гнійної флори, збудників туберкульозу, грибів, вірусів, а також миючими властивостями.

Застосовують для дезінфекції поверхонь у приміщеннях, предметах обстановки, санітарно-технічного обладнання, білизни, хірургічних інструментів, ендоскопів. Концентрація засобу препарату 1-10%, препарат розчиняють у воді.

Застосування - протирання поверхонь або занурення предметів дезінфікуючий розчин. Розчин застосовують багаторазово. Контроль якості передстерилізаційної підготовки проводять із використанням проби на залишкову кров (бензидинової, амідопіринової проби). Час обробки (занурення) виробів з металу, пластмас – 60 хв при концентрації 5%, забрудненої білизни (замочування) – 120 хв при концентрації 5%.

Дезінфекційний засіб «Кемі-сайд» (Росія). Діючі початки 1,1-біфенід - 3-3,5%, 5-хлор-2-гідроксідіфенілметан - 2,6-3,2%. Спектр бактерицидної дії широкий: включає паличку туберкульозу, віруси, гриби. Препарат розводять водою, готують 0,5 %, 1 %, 2 % розчин.

Застосовують для дезінфекції апаратів, приладів, санітарно-технічного обладнання, поверхонь стін, столів, підлоги. Спосіб знезараження - одне або дворазове протирання.

Дезінфікуючий засіб "Лізафін-спеціаль" (Росія). Початки: алкілдиметилбензиламмоній хлорид, глютаровий альдегід, глікосоль, спирт денатурований.

Антимікробний спектр – бактерії, включаючи паличку туберкульозу, віруси, гриби. Має миючу властивість.

Застосовують у концентраціях 1-5% препарату. Використовують для дезінфекції поверхонь (підлоги, стінок), хірургічних столів, меблів, предметів догляду за хворими. Застосовують для передстерилізаційного оброблення предметів зі скла, металу, пластмас — ендоскопів, інструментів. Дезінфекцію проводять шляхом замочування, протирання, занурення. Час обробки інструментів, ендоскопів при використанні 1% розчину – 60 хв, 1,5% – 30 хв, 2% – 15 хв при зануренні в розчин препарату.

Боротьба із мікрофлорою на шляхах повітряного інфікування

Хірургічний стаціонар включає кілька основних функціональних підрозділів: операційний блок, палати хірургічного відділення, перев'язувальні, процедурні та ін.

Успіх профілактики екзогенного інфікування у хірургічних хворих можливий за умови комплексного підходу на всіх етапах

перебування хворого у стаціонарі: приймальне відділення – хірургічне відділення – діагностичні кабінети – перев'язувальна – операційна.

Вся робота хірургічного стаціонаруз профілактики екзогенної інфекції починається з поділу хворих на «чистих» та «гнійних». Хворих з гнійно-запальними хірургічними захворюваннями госпіталізують до гнійних (інфекційних) хірургічних відділень, які повністю ізольовані від чистих відділень. Вони працює свій персонал, є свої перев'язувальні, операційні, процедурні приміщення (для виконання вливань, інфузій, взяття крові для лабораторних досліджень тощо). Це відділення має бути в окремому приміщенні. За наявності лише одного хірургічного відділення у ньому виділяють спеціальні палати для інфікованих хворих, палати розташовуються в одній його частині (відсіку) з окремою перев'язувальною в тому ж відсіку.

У приймальному відділенні,де проводяться первинний огляд та обстеження надійшли, відразу ж поділяють потоки хворих на «чистих» та «гнійних». У приймальному відділенні виконують санітарно-гігієнічну обробку, яка передбачає миття хворих (гігієнічну ванну або душ) та їх перевдягання. За певних умов (педикульоз, короста) проводять спеціальну обробку, а також дезінфекцію та дезінсекцію білизни.

У хірургічному відділеннідля підтримки санітарного режиму проводять щоденне вологе прибирання із застосуванням антисептичних засобів і 1 раз на 3 дні - вологе прибирання стін (протирання вологою щіткою, ганчіркою). Вологій обробці піддають меблі відділення. Регулярне провітрювання, використання кондиціонерів дозволяють знизити ступінь бактеріальної обсіменіння приміщень відділення. Важливе значення має санітарний режим для персоналу: душ перед початком роботи, змінний одяг та взуття, носіння ковпаків. Важливий засіб профілактики - обстеження персоналу на бацилоносійство (мазки з носа, глотки) та ізоляція співробітників із застудними та гнійничковими захворюваннями.

Основний шлях інфікування ран в операційній— контактний (близько 90% випадків), лише 10% випадків інфікування відбувається повітряним шляхом.Кожен член хірургічної бригади, незважаючи на спеціальну підготовку до операції, стерильну операційну білизну, дотримання режиму роботи виділяє в навколишнє повітря до 1500 мікроорганізмів за хвилину. За 1-1,5 години роботи однієї хірургічної бригади бактеріальна забрудненість повітря в операційній збільшується на 100%. Допустима кількість мікроорганізмів в 1 м 3 повітря операційної перед початком роботи не повинна перевищувати 500, під час операції - 1000 за умови відсутності в повітрі патогенних мікроорганізмів. Підтримувати такий рівень вдається за допомогою спеціальних пристроїв системи вентиляції, режиму роботи та збирання операційної, дезінфекції повітря та предметів.

Хірургічний стаціонар включає кілька основних функціональних підрозділів: операційний блок, хірургічні відділення, перев'язувальні, процедурні.

Операційний блок— набір спеціальних приміщень для виконання операцій та проведення заходів, що їх забезпечують. Операційний блок повинен розташовуватися в окремому приміщенні або в крилі будівлі, з'єднаному коридором з хірургічними відділеннями, або на окремому поверсі багатоповерхового хірургічного корпусу. Найчастіше є розділені між собою операційні до виконання втручань у «чистих» і «гнійних» хворих, хоча доцільніше передбачити окремий, ізольований операційний блок при гнійних хірургічних відділеннях.

Операційний блок відокремлений від хірургічних відділень спеціальним тамбуром - частіше це частина коридору, в яку виходять приміщення операційного блоку загального режиму. Для забезпечення режиму стерильності операційному блоці виділяють спеціальні функціональні зони (схема 3).

1. Зона стерильного режимупоєднує операційну, передопераційну та стерилізаційну. У приміщеннях цієї зони роблять такі дії: в операційній - безпосередньо операції; у передопераційній – підготовку рук хірурга до операції; у стерилізаційній - стерилізацію інструментів, які знадобляться в ході операції або використовуються повторно.
2. У зону суворого режимувходять такі приміщення, як санпропускник, що складається з кімнат для роздягання персоналу, душових установок, кабін для одягу стерильного одягу. Ці приміщення розташовуються послідовно, і персонал виходить із кабіни для одягання прямо чи через коридор у передопераційну. До цієї зони входять приміщення для зберігання хірургічних інструментів та апаратів, наркозної апаратури та медикаментів, кабінет переливання крові, приміщення для чергової бригади, старшої операційної сестри, санітарний вузол для персоналу операційного блоку.
3. Зона обмеженого режимуабо технічна зона, що об'єднує виробничі приміщення для забезпечення роботи операційного блоку: тут знаходяться апаратура для кондиціювання повітря, вакуумні установки, установки для постачання операційної кисню та наркотичних газів, тут же розташовуються акумуляторна підстанція для аварійного освітлення, фотолабораторія для прояву рентгенівських плівок.
4. У зоні загального режимузнаходяться кабінети завідувача, старшої медичної сестри, приміщення для розбору брудної білизни та ін.

Режим роботи операційного блоку передбачає обмеження його відвідин. У зоні стерильного режиму повинні перебувати лише хірурги та їх асистенти, що беруть участь в операції, операційні сестри, анестезіологи та анестезисти, санітарка для поточного прибирання операційної. У зону стерильного режиму допускаються студенти і лікарі, що стажуються. Працівники операційного блоку носять спеціальний одяг: халати або куртки та штани, що відрізняються за кольором від одягу співробітників інших відділень.

Контроль за режимом стерильності операційного блоку проводять періодично шляхом бактеріологічного дослідження повітря операційної, змивів зі стін, стелі, апаратів та приладів. Матеріали для сівби беруть 1 раз на місяць; щотижня, крім того, вибірково роблять посів із рук працівників блоку для контролю стерильності.

Стерильний режим операційної досягається рахунок попередження занесення сюди з інших приміщень мікроорганізмів та його поширення. Спеціальний пристрій операційного блоку, використання стерильних шлюзів перед входом в операційну, підготовка хворого до операції (миття, зміна білизни, збривання волосся в області операційного поля), підготовка до операції персоналу (обов'язкове перевдягання, використання стерильної білизни, надягання бахіл, шапочок, масок, обробка рук) значно обмежують проникнення мікроорганізмів в операційну.

Мікроорганізми у повітрі, на предметах дуже рідко перебувають у ізольованому вигляді — переважно вони фіксовані на мікроскопічних частинках пилу. Тому ретельне видалення пилу, як і попередження проникнення їх у операційну, зменшують ступінь мікробного забруднення.

В операційній передбачені такі види збирання:попередня, поточна, післяопераційна, заключна та генеральна.

Перед початком операції вологою ганчіркою протирають усі предмети, прилади, підвіконня, видаляють пил, що осів за ніч. (Попереднє прибирання).У ході операції постійно прибирають серветки, що впали на підлогу, кульки, інструменти. (поточне прибирання).У проміжку між операціями, коли хворого вивезено з операційної, прибирають білизну, серветки, інструменти; вологою серветкою, змоченою розчином антисептичних засобів, протирають операційний стіл і накривають його простирадлом; підлогу протирають вологою ганчіркою (післяопераційне прибирання).Після закінчення робочого дня виробляють заключний убірку, яка включає вологе прибирання з протиранням стелі, стін, підвіконь, всіх предметів та апаратури, підлоги з використанням дезінфікуючих розчинів (1-3% розчину пероксиду водню з синтетичним миючим засобом, розчину бензалконію хлориду та ін.) та подальшим включенням бактерицидних ламп.

Наприкінці тижня здійснюють генеральне прибиранняопераційної. Починають її з операційної дезінфекції: стеля, стіни, всі предмети, підлогу обприскують дезінфікуючим розчином, а потім видаляють його шляхом протирання. Після цього проводять загальне вологе прибирання та включають бактерицидні ультрафіолетові (УФ) лампи. Генеральне прибирання може бути позачерговим — при забрудненні операційною гноєм, кишковим вмістом, після операції у хворих з анаеробною інфекцією (газовою гангреною).

Для опромінення повітря та предметів, що знаходяться в операційній, використовують підлогові (пересувні), настінні, стельові бактерицидні УФ-лампи різної потужності (рис. 1). Бактерицидні лампи, забезпечені спеціальними екранами, що захищають від прямої дії УФ-променів, можуть працювати за наявності людей в операційній.

Крім бактерицидних ламп, для знезараження повітря в операційній можуть бути використані аерозолі бактерицидних речовин, що розпорошуються спеціальним апаратом типу «Дезінфаль». Як бактерицидні речовини використовують суміш, що містить 3% розчин пероксиду водню і 0,5% молочної кислоти. Розпилення повинно проводитися напередодні, у крайньому випадку – не менше ніж за 2 години до початку операції.

Попередження забруднення повітря в операційній досягають механічною системою вентиляції, що здійснюється шляхом подачі повітря з вулиці або рахунок його рециркуляції. За допомогою припливної вентиляції повітря нагнітається через фільтри операційну. Разом з пилом, що осідає на фільтрах, видаляються фіксовані на ній мікроби. Повітря виходить із операційної через природні щілини. Такий напрямок потоку дозволяє уникнути проникнення забрудненого повітря із сусідніх з операційною приміщень, у тому числі з хірургічних відділень. За відсутності централізованої системи очищення повітря від пилу та мікробів можуть бути використані спеціальні пересувні очищувачі повітря (ВОПР-1,5). За 15 хв роботи апарату кількість мікробів в операційній зменшується у 7-10 разів.

Для виконання деяких втручань (таких, як пересадка органів, що вимагає подальшого застосування імунодепресивних засобів, імплантація протезів, операції при великих опіках) використовують операційні з ламінарним потоком стерильного кондиціонованого повітря (рис. 2). Кількість мікроорганізмів у таких операційних у десятки разів нижче, ніж за звичайної системи кондиціювання повітря. Ламінарний потік забезпечує за годину 500-кратний обмін повітря, що нагнітається під тиском 0,2-0,3 атм. через спеціальний фільтр, що являє собою стелю операційної, і виходить через отвори в підлозі. Цим створюється постійний вертикальний потік: в операційну надходить стерильний повітря, а спрямований його потік забирає мікроорганізми, що потрапили в повітря від хворого або осіб, які беруть участь в операції. Ламінарний потік повітря може бути як вертикальним, так і горизонтальним.

У старих операційних можлива установка спеціального боксу-ізолятора з ламінарним потоком повітря: стіни боксу з пластику або скла не досягають підлоги, і стерильне повітря, що нагнітається через фільтр-стелю, створює вертикальний ламінарний потік, який витісняє наявне в боксі повітря в щілини, що утворилися між його стінками. та підлогою (рис. 3).

Боротьба з мікрофлорою на етапах контактного інфікування рани

Для запобігання контактному інфікуванню необхідно, щоб було стерильним все, що стикається з раною.Цього досягають спеціальною обробкою операційної білизни, перев'язувального та шовного матеріалу, рукавичок, інструментів, обробкою рук хірурга та операційного поля. Стерилізація(Sterilis- Безплідний) - повне звільнення від мікроорганізмів усіх предметів, розчинів, матеріалів. Дезінфекціяпередбачає знищення патогенної мікробної флори. Стерилізація шовного матеріалу спрямовано профілактику як контактного, і імплантаційного інфікування рани.

Стерилізація інструментів, перев'язувального матеріалу та білизни включає такі основні етапи: I – передстерилізаційна підготовка матеріалу; II - укладання та підготовка до стерилізації; III - стерилізація; IV - Зберігання стерильного матеріалу. Усі ці етапи виконують відповідно до галузевого стандарту «Стерилізація та дезінфекція виробів медичного призначення».

Стерилізація інструментів

Етап I - передстерилізаційна підготовка

Мета передстерилізаційної підготовки - ретельне механічне очищення інструментів, шприців, ін'єкційних голок, систем для трансфузії, видалення пірогенних речовин та знищення вірусу гепатиту. Персонал повинен працювати у гумових рукавичках.

Вживані, але неінфіковані інструментиретельно миють проточною водою щітками в окремій раковині протягом 5 хв (інструменти, забруднені кров'ю, миють відразу, не допускаючи висихання крові) і потім на 15-20 хв замочують в одному зі спеціальних миючих розчинів, підігрітому до 50 С. вигляді.

Після замочування інструменти миють у тому ж розчині йоржами, щітками (особливо ретельно обробляють замки, зубчики, насічки), потім протягом 5 хв обполіскують теплою водою і протягом 1 хв прополіскують у дистильованій воді. Після цього інструменти та шприци поміщають у сухоповітряний стерилізатор при температурі 85°С для висушування, після чого вони готові до стерилізації.

Інструменти та шприци, забруднені гноєм або кишковим вмістом,попередньо поміщають в емальовані ємності з 0,1% розчином діоциду на 30 хв. Потім у цьому розчині їх миють йоржами, щітками, обполіскують проточною водою і опускають в один з миючих розчинів, проводячи подальшу обробку за описаною вище методикою.

Інструменти після операції, проведеної у хворого з анаеробною інфекцією,замочують на 1 год у спеціальному розчині, що складається з 6% розчину пероксиду водню і 0,5% розчину миючого засобу, потім миють щіткою в цьому розчині і кип'ятять 90 хв. Лише після цього інструменти готують до стерилізації так само, як і неінфіковані інструменти. Через 1 добу. (час для проростання суперечка) їх піддають автоклавування чи кип'ятіння (дрібна стерилізація).

Стерилізацію голок проводять вимушено, коли немає можливості застосувати голки разового використання.

Пункційні, ін'єкційні голкипісля вживання промивають за допомогою шприца теплою водою, а потім 1% розчином гідрокарбонату натрію, канал голки прочищають мандреном, промивають 0,5% розчином аміаку і проточною водою. Після цього голку з вставленим мандреном кип'ятять протягом 30 хв в 2% розчині натрію гідрокарбонату, а через 8-12 год - повторно дистильованої протягом 40 хв і висушують, після чого канал голки просушують шляхом продування діетиловим ефіром або спиртом за допомогою шприца або гумові груші. Голки, забруднені гноєм, ретельно миють, просвіт промивають проточною водою; потім поміщають на 1 год дезинфікуючий розчин, додатково промиваючи канал за допомогою шприца або гумової груші, і піддають такій же подальшій обробці, як не забруднені гноєм голки.

Системи для трансфузіїлікарських речовин або крові разового користування, але вимушено вживаються повторно. Проводять ретельну обробку для попередження посттрансфузійних реакцій та ускладнень. У сучасних умовах використовують разові системи для трансфузії, стерилізовані у заводських умовах. Систему багаторазового використання відразу після переливання крові або лікарського препарату розбирають - роз'єднують скляні частини, крапельницю та гумові трубки, ретельно промивають проточною водою, розминаючи пальцями гумову трубку (для кращого видалення залишків крові). Частини системи опускають на 2 год підігрітий до 60 С спеціальний розчин, що містить 1% розчин натрію гідрокарбонату і 1% розчин аміаку. Потім частини системи промивають проточною водою і кип'ятять у дистильованій воді 30 хв, знову промивають водою, розминаючи гумові трубки, і кип'ятять 20 хв у дистильованій воді. Після цього систему монтують та упаковують для стерилізації.

Гумові рукавички.У практиці використовують рукавички разового користування, стерилізовані в заводських умовах. При необхідності повторного використання рукавички, забруднені кров'ю, миють, не знімаючи з рук, проточною водою до повного видалення крові, просушують рушником і поміщають на 30 хв в 0,5% розчин аміаку або миючий і дезінфікуючий розчин. Потім ретельно миють проточною водою, вивішують на мотузці для просушування, після чого упаковують для стерилізації.

Гумові рукавички, забруднені гноєм чи кишковим вмістом, підлягають знищенню. За крайньої необхідності їх миють у проточній воді і поміщають у миючий і дезінфікуючий розчин на 1 годину, промиють проточною водою і упаковують для стерилізації. Ці рукавички можуть використовуватися для роботи в гнійній перев'язувальній.

Для контролюповноти видалення крові з предметів, що пройшли передстерилізаційну обробку, використовують бензидинову пробу: на предмет наносять по 3 краплі 1% бензидину розчину і пероксиду водню. Поява синьо-зеленого забарвлення вказує на сліди крові, що залишилася на предметах. У цьому випадку потрібна повторна обробка.

Етап II - укладання та підготовка до стерилізації

Для стерилізації в сухожарових стерилізаторах інструменти поміщають металеві коробки, укладаючи їх вертикально в один шар. Шприци в розібраному вигляді загортають у 2 шари спеціального щільного паперу. Кришки від коробок стерилізують поряд. Останнім часом переважно застосовуються шприци разового користування, стерилізовані в заводських умовах.

Для стерилізації парою під тиском у парових стерилізаторах (автоклавах) інструменти загортають у вафельний рушник або бавовняну тканину у вигляді пакета і укладають на металеву тацю або сітку. Для конкретних типових операцій набір інструментів готують заздалегідь (наприклад, для операцій на легені, серці, кістках, судинах), укладають на спеціальну сітку та загортають у простирадло у вигляді пакета.

Циліндр і поршень шприца укладають окремо в марлеві серветки і загортають у шматок бавовняної тканини у вигляді пакета, який поміщають у стерилізаційну коробку (бікс). При масовій стерилізації шприців в автоклавах (централізована стерилізація) використовують спеціальне укладання, пошите з бавовняної тканини, з кишенями. У кишені поміщають шприци в розібраному вигляді, поруч голки та пінцет. У кожному укладанні міститься до 5 шприців.

Укладки загортають у бавовняну пелюшку у вигляді пакета і поміщають у стерилізатор.

Сухі гумові рукавички пересипають тальком (зовні та всередині), прокладають марлевими серветками, попарно загортають у серветку та укладають в окремий бікс.

Зібрані системи для переливання крові перевіряють на міцність гумових трубок, щільність їх з'єднання зі скляними деталями і відповідність канюлей павільйонам голки. Систему згортають у вигляді 2-3 кілець, не допускаючи перегину гумових трубок, загортають у велику марлеву серветку, потім - у вафельний рушник і укладають у бікси.

Етап III - стерилізація

Стерилізацію інструментів, шприців (з позначкою на шприці 200 °С), голок, скляний посуд проводять у сухожарових шафах-стерилізаторах(Рис. 4). Предмети вільно укладають на полицях стерилізатора у металевих коробках (при знятих кришках) та включають підігрів. При відкритих дверцятах доводять температуру до 80-85 ° С і протягом 30 хв просушують - видаляють вологу з внутрішніх поверхонь шафи і предметів, що стерилізуються. Потім закривають дверцята, доводять температуру до заданої (180 °С), підтримуючи її автоматично, і стерилізують протягом 60 хв. Після відключення системи підігріву та зниження температури до 70-50 ° С відкривають дверцята шафи і стерильним інструментом закривають кришками металеві коробки з інструментами. Через 15-20 хв (після повного охолодження стерилізатора) камеру розвантажують.

При роботі з сухожаровим стерилізатором необхідно дотримуватись заходів безпеки: апарат повинен бути заземлений, після закінчення стерилізації слід відчиняти дверцята шафи тільки при зниженні температури до 70 - 50 °С. Забороняється користуватись несправним апаратом.

Стерилізацію інструментів, шприців, систем для переливання крові можна проводити у паровому стерилізаторі(Автоклаві) (рис. 5).

Запаковані предмети укладають у стерилізаційну камеру. Якщо упаковки укладені в бікси, їх решітки повинні бути відкриті. Бікси або інші упаковки укладають вільно, щоб пара розподілялася рівномірно.

Хірургічні інструменти та шприци стерилізують протягом 20 хв при 2 атм 1 що відповідає температурі 132,9 С. Час початку стерилізації відраховують з моменту досягнення відповідного тиску. Гумові рукавички, системи для переливання крові, гумові дренажні трубки стерилізують при 1,1 атм (температура пари 120 ° С) протягом 45 хв. При розвантаженні автоклава закривають отвори у біксах.

Методи стерилізації в сухожарових та парових стерилізаторах слід розглядати як основні.Метод стерилізації кип'ятінням застосовують у невеликих лікувальних закладах, де немає централізованої стерилізаційної. Використовують стаціонарні або портативні електричні кип'ятильники, в яких можна стерилізувати інструменти, шприци, голки, скло, гумові дренажі, катетери, рукавички.

У кип'ятильник наливають дистильовану воду, підвищення температури кипіння води і руйнування оболонки бактерій додають 20 г натрію гідрокарбонату на 1 л води (2% розчин). На дно кип'ятильника укладають тонкий простіраний шар з вати з марлею, щоб солі у вигляді накипу осідали на ньому, а не на інструментах.

Інструменти в розібраному вигляді укладають на спеціальні сітки і опускають гачками на дно окропу, залишаючи ручки гачків зовні, і закривають окропом кришкою. Час стерилізації – 40 хв з моменту закипання води. Після закінчення стерилізації сітку з інструментами підхоплюють гачками, дають стекти воді і переносять на спеціальний столик, покритий стерильним простирадлом, складеним у 4 шари. Операційна сестра розкладає інструменти на великому операційному столі.

Шприци та голки стерилізують окремо від інструментів, у розібраному вигляді (кип'ятінням у дистильованій воді без додавання гідрокарбонату натрію) протягом 45 хв. Шприци та голки для люмбальної пункції та внутрішньовенних вливань кип'ятять у двічі дистильованій воді без додавання гідрокарбонату натрію.

Інструменти, шприци та голки, забруднені гноєм, каловими масами, після спеціальної попередньої обробки стерилізують кип'ятінням протягом 90 хв в окремому окропі.

Інструменти, шприци та голки, що застосовуються у хворих з газовою гангреною, підлягають ретельній обробці та подальшій дробовій стерилізації кип'ятінням. Їх кип'ятять протягом 1 години, витягають з кип'ятильника і залишають при кімнатній температурі на 12-24 години (для проростання спор), а потім повторно стерилізують кип'ятінням протягом 1 години (дрібна стерилізація).

Основний метод стерилізації виробів із гуми (дренажів, катетерів, рукавичок) – автоклавування. У виняткових випадках їх кип'ятять протягом 15 хв.

Стерилізацію інструментів та предметів, що не підлягають термічній обробці(ендоскопів, торакоскопів, лапароскопів, апаратів або блоків апаратів для штучного кровообігу, гемосорбції) здійснюють у спеціальному газовому стерилізаторі ГПД-250. Предмети для стерилізації поміщають у герметичну камеру стерилізації (рис. 6), яку наповнюють окисом етилену. Час експозиції - 16 год при температурі 18 С. Стерилізація може проводитися також сумішшю окису етилену та броміду метилену при температурі 55 ° С протягом 6 год.

Стерилізація інструментів та оптичних апаратів (лапароскопів, торакоскопів) може бути проведена у спиртовому розчині хлоргексидину та першомурі. При такій стерилізації (хімічними засобами) застосовують металеві коробки з кришками, що попереджає випаровування препарату та забруднення повітря приміщень; за відсутності спеціального посуду використовують емальований або скляний. Інструменти заливають розчином (щоб він повністю покривав їх) та закривають кришкою.

В екстрених випадках,коли неможливо забезпечити стерилізацію інструментів жодним із зазначених способів, використовують метод випалювання. У металевий таз або лоток наливають 15-20 мл спирту, кілька інструментів укладають на дно і підпалюють спирт. Метод випалювання недостатньо надійний, пожежо- та вибухонебезпечний (наявність кисню, пари наркотичних речовин у повітрі приміщень), тому до нього вдаються у виняткових випадках, суворо дотримуючись заходів пожежної безпеки.

Ріжучі інструменти (скальпелі, ножиці) при стерилізації звичайними затупляються методами, тому її проводять практично без термічної обробки. Після передстерилізаційної підготовки інструменти занурюють у 96% розчин етанолу на 30 хв або потрійний розчин на 3 год. Допускається лише короткострокове кип'ятіння ріжучих інструментів. Скальпелі укладають в окрему сітку, їх леза обгортають марлею і кип'ятять у дистильованій воді без додавання натрію гідрокарбонату протягом 10 хв, потім поміщають в 96% розчин етанолу на 30 хв.

Стерильний матеріал зберігають у спеціальному приміщенні. Не допускається зберігання в одному приміщенні нестерильних та стерильних матеріалів. Стерильність матеріалу в біксах (якщо вони не відкривалися) зберігається протягом 48 годин. вони можуть зберігатися у цих біксах до 3 діб. При централізованій стерилізації шприци зберігають стерильність протягом 25 днів.

Стерилізація перев'язувального матеріалу, операційної білизни

Етап I - передстерилізаційна підготовка матеріалу

До перев'язувального матеріалу відносяться марлеві кульки, серветки, тампони, турунди, бинти. Застосовують їх під час операції та перев'язки з метою осушення рани, зупинки кровотечі, дренування чи тампонади рани. Перев'язувальний матеріал готують із марлі та вати, рідше — з віскози та лігніну. Він повинен мати такі властивості:

1) бути біологічно та хімічно інтактним, не надавати негативного впливу на процеси загоєння;

2) мати гарну гігроскопічність;

3) бути мінімально сипучим, так як нитки, що відокремилися, можуть залишитися в рані як сторонні тіла;

4) бути м'яким, еластичним, не травмувати тканини;

5) легко стерилізуватись і не втрачати при цьому своїх властивостей;

6) бути дешевим у виробництві (з урахуванням великої витрати матеріалу); норма витрати за рік на 1 хірургічне ліжко - 200 м марлі та 225 бинтів; тільки на таку невелику операцію, як апендектомія, витрачається близько 7 м марлі.

Перев'язувальний матеріал готують із марлі, попередньо розрізаної на шматочки. Марлю складають, підгортаючи краї всередину, щоб не було вільного краю (з нього можуть обсипатися волокна тканини). Матеріал заготовляють про запас, поповнюючи його запаси в міру витрачання. Для зручності підрахунку матеріалу, що витрачається під час операції, його укладають перед стерилізацією певним чином: кульки - в марлеві мішечки по 50-1000 штук, серветки - у зв'язки по 10 штук. Перев'язувальний матеріал, крім бинтів, які не забруднені кров'ю, після застосування спалюють.

До операційної білизни відносяться хірургічні халати, простирадла, рушники, маски, шапочки, бахіли. Матеріалом для виготовлення служать бавовняні тканини — бязь, полотно. Операційна білизна багаторазового користування повинна мати спеціальну мітку та здаватися у прання окремо від іншої білизни, у спеціальних мішках. У халатів не повинно бути кишень, поясів; простирадла повинні були підшиті. Халати, простирадла, пелюшки, рушники для стерилізації складають у вигляді рулонів, щоб їх можна було легко розгорнути при використанні.

Етап II - укладання та підготовка матеріалу до стерилізації.

Перев'язувальний матеріал та операційну білизну укладають у бікси (рис. 7). За відсутності біксів допускається стерилізація у полотняних мішках.

При універсальному укладаннів бікс (мішок) поміщають матеріал, призначений для однієї невеликої типової операції (апендектомії, грижосічення, флебектомії та ін). При цілеспрямованому укладанніу бікс (мішок) закладають необхідний набір перев'язувального матеріалу та операційної білизни, призначеної для конкретної операції (пневмонектомії, резекції шлунка та ін.). При видовому укладаннів бікс укладають певний вид перев'язувального матеріалу або білизни (бікс із халатами, бікс із серветками, бікс із кульками тощо).

Спочатку перевіряють справність бікса, потім на його дно поміщають розгорнуте простирадло, кінці якого знаходяться зовні. Перев'язувальний матеріал укладають вертикально секторами пачками або пакетами. Матеріал укладають нещільно, щоб забезпечити доступ пари, всередину поміщають індикатори режиму стерилізації (максимальні термометри, речовини, що плавляться, або пробірки з тест-мікробом), краї простирадла загортають, бікс закривають кришкою і защіплюють замок. До кришки бікса прикріплюють бирку з клейонки із зазначенням дати стерилізації та прізвища, що її здійснювало.

При стерилізації в мішку перев'язувальний матеріал або білизну укладають нещільно, мішок зав'язують тасьмами, опускають його в інший мішок і зав'язують. При необхідності використання матеріалу мішок перешкодять на табурет, санітарка розв'язує верхній мішок, розводить краї і зрушує донизу. Операційна сестра розв'язує внутрішній мішок стерильними руками, розкриває його та витягує матеріал.

Етап III - стерилізація

Експлуатація автоклава допускається лише за наявності дозволу Інспекції котлонагляду з відміткою у паспорті апарату. До роботи з автоклавом допускаються особи, які здали технічний мінімум з експлуатації автоклава та мають відповідний дозвіл. Робота з автоклавом вимагає точного дотримання інструкції з експлуатації апарату. Необхідно дотримуватися загальні правила техніки безпеки:

• обов'язково заземлювати паровий стерилізатор з електричним підігрівом;
• не розпочинати роботу на несправному апараті;
• під час роботи не залишати апарат без нагляду;
• не доливати воду у вирву під час роботи стерилізатора;
• після закінчення стерилізації відключати нагрівач від мережі та прикривати вентиль впуску пари в стерилізаційну камеру з пароутворювача;
• відкривати кришку камери стерилізації тільки після того, як стрілка манометра опуститься до нуля.

Відлік часу стерилізації починається з досягнення заданого тиску. Перев'язувальний матеріал та операційну білизну стерилізують протягом 20 хв при тиску 2 атм (температура 132,9°С).

Етап IV - зберігання стерильного матеріалу

Після закінчення стерилізації та сушіння білизни стерилізаційну камеру розвантажують, бікси виймають, відразу закривають грати та переносять їх на спеціальний стіл для стерильного матеріалу. Зберігають бікси у шафах під замком у спеціальній кімнаті. Допустимий термін зберігання перев'язувального матеріалу та білизни, якщо бікс не розкривався, - 48 годин з моменту закінчення стерилізації. Матеріал та білизна, стерилізовані в мішках, зберігають не більше 24 год.

Контроль стерильності

Контроль стерильності матеріалу та режиму стерилізації в автоклавах проводять прямим та непрямим (непрямим) способами. Прямий спосіб - бактеріологічний: посів з перев'язувального матеріалу та білизни або використання бактеріологічних тестів. Посів роблять наступним чином: в операційній розкривають бікс, маленькими шматочками марлі, зволоженою ізотонічним розчином хлориду натрію, кілька разів проводять по білизні, після чого шматочки марлі опускають у пробірку, яку направляють у бактеріологічну лабораторію.

Для бактеріологічних тестів використовують пробірки з відомою непатогенною спороносною культурою мікроорганізмів, які гинуть при певній температурі. Пробірки вкладають углиб бікса, а після закінчення стерилізації витягують і направляють у лабораторію. Відсутність зростання бактерій свідчить про стерильності матеріалу. Цей тест проводять 1 раз на 10 днів.

Непрямі методи контролю стерильності матеріалу застосовують завжди при кожній стерилізації. Для цього використовують речовини з певною точкою плавлення: бензойну кислоту (120°С), резорцин (119°С), антипірин (110°С). Ці речовини випускаються у ампулах. Їх застосовують також у пробірках (по 0,5 г), закритих марлевою пробкою. У бікс між шарами стерилізованого матеріалу закладають 1-2 ампули. Розплавлення порошку і перетворення його на суцільну масу вказують на те, що температура в біксі дорівнювала точці плавлення контрольної речовини або перевищувала її. Для контролю режиму стерилізації в сухожарових стерилізаторах використовують порошкоподібні речовини з вищою точкою плавлення: аскорбінову кислоту (187-192 С), янтарну кислоту (180-184 С), пілокарпіну гідрохлорид (200 С), тіомочевину (180 С).

Об'єктивнішим з непрямих методів контролю режиму стерилізації є термометрія. У кожен бікс між стерилізованим матеріалом укладають 1-2 термометри. Їх показники відображають максимальну температуру, але не вказують час експозиції (протягом якого періоду ця температура підтримувалася в біксі), у зв'язку з чим цей метод не виключає прямого контролю стерильності з використанням бактеріологічних тестів.

Стерилізація апаратів для інгаляційного наркозу

Апарати для штучної вентиляції легень та інгаляційного наркозу можуть бути причиною перехресного інфікування хворих та поширення внутрішньолікарняної інфекції. Інфікування дихальних шляхів хворих може призвести до розвитку в післяопераційному періоді запальних ускладнень, що протікають у вигляді пневмонії, бронхіту, трахеїту, фарингіту. У зв'язку з цим знезараження анестезіологічної та дихальної апаратури – один із важливих заходів асептики, спрямоване на попередження контактного та інгаляційного інфікування дихальних шляхів хворого.

Для запобігання подібним ускладненням необхідно виконувати такі основні рекомендації.

1. Ендотрахеальні трубки повинні бути разового користування, стерилізація їх повинна проводитися холодним способом у заводських умовах.
2. Після наркозу, проведення штучної вентиляції легких апаратів, елементи дихального контуру піддають обробці антисептичними хімічними засобами. Апарати обробляють у зібраному вигляді. Може бути використаний 0,5% спиртовий розчин хлоргексидину: 1 мл 20% водного розчину хлоргексидину розчиняють у 40 мл 96% розчині етанолу. Суміш заливають у випарник наркозного апарату або зволожувач апарату для штучної вентиляції легень. Вентиляцію проводять по напівзакритому контуру протягом 1 години при швидкості газотоку 2 л/хв. Потім залишки антисептика видаляють, апарат провітрюють протягом 15 хв по напіввідкритому контуру.

Як антисептик у подібних ситуаціях можна використовувати 40% водний розчин формальдегіду (формалін). Для цього випарник або зволожувач заливають 100 мл формаліну і проводять вентиляцію протягом 20 хв. Потім видаляють залишки формаліну, заливають розчин аміаку та продовжують вентиляцію до повного зникнення запаху аміаку.

Для стерилізації апаратів у зібраному вигляді можна застосувати газовий метод (з використанням окису етилену) або γ-випромінювання.

1. Якщо апарати були застосовані у хворих з гнійними захворюваннями, туберкульозом легких або дихальних шляхів, розбирають дихальний контур (знімають шланги, приєднувальні елементи, кришки клапанних коробок, дихальний мішок, адсорбер). Усі деталі обов'язково промивають під струменем теплої води, потім замочують у гарячому миючому розчині (див. Стерилізація інструментів)на 15 хв. У цьому ж розчині кожну деталь миють ватно-марлевим тампоном протягом 30 с, після чого прополіскують проточною, а потім дистильованою водою. Власне стерилізаційну обробку деталей проводять 0,5% водним розчином хлоргексидину, поміщаючи в ємності на 30 хв, чи 3% розчином пероксиду водню (80 хв), чи 3% розчином формальдегіду (30 хв). У разі при інфікуванні мікобактеріями туберкульозу експозицію збільшують до 90 хв. Оптимальний варіант - використання у подібних ситуаціях пластикових шлангів, масок одноразового користування.

Після обробки антисептиком деталі ретельно промивають стерильною водою протягом 10 хв, сушать та зберігають в асептичних умовах до використання.

Стерилізація ендоскопічної апаратури

Проблема інфекції при ендоскопічних дослідженнях стоїть гостро через небезпеку зараження хворих і персоналу вірулентними мікроорганізмами.

Основні етапи стерилізації ендоскопічних приладів та інструментів – їх механічне очищення, промивання, передстерилізаційна обробка та стерилізація, просушування та зберігання.

Для очищення ендоскопів використовують миючі розчини (див. Стерилізація інструментів).

Після закінчення ендоскопічного дослідження з ендоскопа негайно видаляють забруднення (шлунковий, кишковий сік, слиз, кров та ін.) механічним шляхом з використанням миючих засобів: із зовнішньої поверхні - за допомогою тканинних серветок, з каналів (біопсійного, операційного) - спеціальної також шляхом подачі в них достатньої кількості повітря, води чи розчину нейтрального мила; жорсткі ендоскопи перед очищенням розбирають на деталі, що комплектують.

Для обробки ендоскопів застосовують 0,5% водний або спиртовий розчин хлоргексидину, 70% розчин етанолу, 2,5% розчин глутарового альдегіду, препарат Сайдекс, 3% і 6% розчини пероксиду водню при температурі 20?2 ?С.

Крім методу занурення, можливе також 3-кратне протирання серветками зовнішньої поверхні робочої частини ендоскопа (послідовно спочатку однією серветкою, інтенсивно змоченою в антисептичному розчині, потім після заповнення каналів ендоскопа розчином на 15 хв - другої і третьої).

Частини ендоскопа обробляють розчинами антисептиків шляхом занурення в емальовану або скляну ємність, закриту кришкою, також занурюють деталі жорстких ендоскопів (за винятком оптичних частин приладів і гнучких частин фіброендоскопів). В останні роки з'явилися нові так звані надгерметичні моделі фіброскопів, які можна повністю занурювати в антисептичний розчин. Канали заповнюють цим розчином за допомогою шприца або електровідсмоктування.

Розроблено спеціальні установки (миючі машини) для передстерилізаційного очищення та стерилізації гнучких ендоскопів, що відрізняються обсягом дезінфікуючого засобу, що заливається у спеціальну ванну.

Залишки антисептичних засобів видаляють з ендоскопічного обладнання дистильованою водою, пропускаючи її через канали ендоскопа і обмиваючи його зовні. Потім шляхом неодноразової подачі повітря через ендоскопні канали видаляють залишки води.

Стерилізацію ендоскопічної апаратури можна проводити в камері для газової стерилізації з використанням окису етилену або суміші окису етилену та броміду метилену (див. Стерилізація інструментів).

Ендоскопи, поміщені в стерильні мішки із щільної бавовняної тканини, зберігають у вертикальному положенні у спеціальних шафах.

Підготовка рук до операції

Обробка рук – важливий засіб профілактики контактної інфекції. Лікарі-хірурги, операційні та перев'язувальні сестри повинні постійно дбати про чистоту рук, доглядати шкіру та нігті. Найбільша кількість мікроорганізмів накопичується під нігтями, у ділянці нігтьових валиків, у тріщинах шкіри. Догляд за руками передбачає попередження тріщин і омозолелостей шкіри, підстригання нігтів (вони мають бути короткими), видалення задирок. Роботу, пов'язану із забрудненням та інфікуванням шкіри рук, потрібно виконувати у рукавичках. Правильний догляд руками слід як етап підготовки до операції. Обробка рук у будь-який спосіб починається з механічного очищення.

До класичних способів обробки рук належать способи Фюрбрінгера, Альфельда, Спасокукоцького-Кочергіна. Способи Фюрбрінгера, Альфельда мають лише історичне значення. Спосіб Спасокукоцького-Кочергінаможе бути використаний як вимушений, коли не можна застосувати сучасні методи. Спосіб передбачає механічне очищення рук 0,5% розчином аміаку. Руки миють у двох тазах по 3 хв серветкою; виконують послідовно рухи, як при миття щіткою, починаючи з пальців лівої руки. У першому тазі руки миють до ліктів, у другому - до межі верхньої та середньої третини передпліччя. Після закінчення миття руки обполіскують розчином аміаку і кисті піднімають догори так, щоб краплі води стікали до ліктів. З цього часу кисті рук постійно знаходяться вище за передпліч. Шкіру рук осушують стерильними серветками: спочатку обидві кисті (цю серветку кидають), потім послідовно нижню та середню третину передпліч.

Знезаражують шкіру серветками, змоченими 96% спиртом, обробляючи двічі по 2,5 хв кисті та нижню третину передпліч, потім кінці пальців і нігтьові валики; нігтьові ложа та складки шкіри пальців змащують 5% спиртовим розчином йоду.

Сучасні способи обробки рук передбачають їх очищення шляхом миття проточною водою з милом або за допомогою рідких миючих засобів та подальшу обробку хімічними антисептиками.

Обробка рук першомуром(Препаратом С-4). Першомур - суміш, що складається з мурашиної кислоти та пероксиду водню. Спочатку готують основний розчин, до складу якого входять 81 мл 85% мурашиної кислоти та 171 мл 33% розчину пероксиду водню. Ці частини змішують у скляній бутлі з притертою пробкою і поміщають у холодильник на 2 години, періодично струшуючи сулію. При взаємодії мурашиної кислоти та пероксиду водню утворюється надмурашина кислота, що чинить сильну бактерицидну дію. З зазначеної кількості основного розчину можна приготувати 10 л робочого розчину, розбавивши дистильованою водою. Робочий розчин придатний для застосування протягом дня. При приготуванні розчину необхідно працювати в гумових рукавичках для запобігання опікам концентрованим розчином мурашиної кислоти або пероксиду водню. Обробка рук передбачає їхнє попереднє миття протягом 1 хв проточною водою з милом. Потім кисті та передпліччя до рівня середньої третини миють серветками в тазу з розчином першомуру протягом 1 хв і осушують стерильними серветками. В одному тазі обробку рук можуть робити 5 осіб.

Обробка рук хлоргексидином.Препарат випускається як 20% водного розчину. Для обробки рук готують 0,5% спиртовий розчин: 500 мл 70% спирту додають 12,5 мл 20% розчину хлоргексидину. Попередньо миють руки проточною водою з милом, осушують стерильними серветками або рушником, а потім протягом 2-3 хв протирають марлевим тампоном, змоченим приготованим розчином.

Обробка рук препаратами АХД, євросепт.Ці засоби містять антисептики, як етанол, хлоргексидин, ефір поліольної жирної кислоти. Декілька мілілітрів розчину виливають на руки і протирають шкіру рук до середньої третини передпліч двічі по 2-3 хв. Попередньо миють руки протягом 1 хв.

Прискорені способи обробки рукзастосовують у амбулаторній практиці або у вимушених (наприклад, військово-польових) умовах. Для прискореного знезараження рук використовують плівкоутворюючий препарат церигель, що відрізняється сильною бактерицидною дією. До його складу входять полівінілбутирол та 96% розчин етанолу. Руки миють водою з милом, ретельно осушують. На долоню наливають 3-4 мл церигеля і ретельно протягом 10 с змочують їм пальці, нігтьові ложа та валики, кисті та нижню частину передпліччя. Напівзігнуті пальці тримають у розведеному положенні протягом 2-3 хв, поки на шкірі не утворюється плівка церигеля, що має захисні та бактерицидні властивості. Після закінчення операції плівка легко знімається марлевими кульками, змоченими спиртом.

Обробка рук може бути виконана шляхом протирання шкіри 96% розчин етанолу протягом 10 хв (спосіб Бруна) або 2% спиртовим розчином йоду протягом 3 хв.

Підготовка операційного поля

Попередня підготовка місця передбачуваного операційного розрізу (операційного поля) починається напередодні операції та включає загальну гігієнічну ванну, зміну білизни. У день операції проводять збривання волосся сухим способом у місці операційного доступу, потім шкіру протирають спиртом.

Перед хірургічним втручанням на операційному столі поле операції широко змащують 5% спиртовим розчином йоду. Саме місце операції ізолюють стерильною білизною і знову змащують 5% спиртовим розчином йоду. Перед накладенням та після накладання швів на шкіру її обробляють тим самим спиртовим розчином. Цей спосіб відомий як спосіб Гроссіха-Філончікова. Для обробки операційного поля використовують також препарати йоду, наприклад йод-+калію йодид, повідон-йод; застосовують їх за тією самою методикою, що і розчин йоду.

При непереносимості йоду шкірою у дорослих хворих і в дітей віком обробку операційного поля проводять 1% спиртовим розчином діамантового зеленого (спосіб Баккала).

Для обробки операційного поля використовують 0,5% спиртовий розчин хлоргексидину, як для обробки рук хірурга перед операцією.

При екстреній операції підготовка операційного поля полягає у збриванні волосся, обробці шкіри 0,5% розчином аміаку, а потім одним із описаних вище способів.

ПРОФІЛАКТИКА ІМПЛАНТАЦІЙНОГО ІНФІКУВАННЯ РАН

Під імплантацієюрозуміють використання, вживлення в організм людини різних матеріалів, тканин, органів, протезів.

Інфікування повітряним чи контактним шляхом обумовлюється короткостроковим впливом під час виконання тих чи інших хірургічних маніпуляцій (перев'язки, операції, лікувальних маніпуляцій, діагностичних методів). При впровадженні мікрофлори з матеріалами, що імплантуються (імплантаційне інфікування організму) вона знаходиться в організмі людини протягом усього періоду перебування імплантату. Останній, будучи стороннім тілом, підтримує запальний процес, що розвивається, і лікування такого ускладнення буде безуспішним доти, поки не відбудеться відторгнення або видалення імплантату (лігатури, протеза, органу). Можлива з самого початку (за рахунок утворення сполучнотканинної капсули) ізоляція мікрофлори разом з імплантатом з утворенням дрімає інфекції, яка може проявитися через тривалий час (через місяці, роки).

До матеріалів, що імплантуються в організм людини, відносяться шовний матеріал, металеві скріпки, дужки, а також протези судин, суглобів, полотно з лавсану, капрону та інших матеріалів, тканини людини та тварин (судини, кістки, тверда мозкова оболонка, шкіра), органи (нирка, печінка, підшлункова залоза та ін), дренажі, катетери, шунти, кава-фільтри, судинні спіралі та ін.

Усі імплантати мають бути стерильними. Стерилізацію їх проводять у різний спосіб (залежно від виду матеріалу): γ-випромінюванням, автоклавуванням, хімічною, газовою стерилізацією, кип'ятінням. Багато протезів випускають у спеціальних упаковках, стерилізовані в заводських умовах γ-випромінюванням.

Найбільше значення у виникненні імплантаційної інфекції має шовний матеріал.Існує понад 40 його видів. Для з'єднання тканин під час операції використовують нитки різного походження, металеві скріпки, дужки, дріт.

Застосовують як нитки, що розсмоктуються, так і не розсмоктуються. Розсмоктуютьсянатуральними нитками є нитки із кетгуту. Подовження термінів розсмоктування кетгуту досягають імпрегнацією ниток металами (хромований, срібний кетгут). Використовують синтетичні нитки, що розсмоктуються, з дексону, вікрилу, окцилону та ін. нерозсмоктуєтьсянатуральним ниткам відносяться нитки з натурального шовку, бавовни, кінського волосу, льону, до синтетичних - нитки з капрону, лавсану, дакрону, нейлону, фторлону та ін.

Для з'єднання (зшивання) тканин застосовують атравматичнийшовний матеріал. Він є шовною ниткою, запресованою в голку, тому при проведенні ниток через прокольний канал тканини додатково не травмуються.

Шовний матеріал повинен відповідати наступним основним вимогам:

1) мати гладку, рівну поверхню та не викликати при проколі додаткового пошкодження тканин;

2) мати хороші маніпуляційні властивості - добре ковзати в тканинах, бути еластичним (достатня розтяжність попереджає здавлення і некроз тканин при їх наростаючому набряку);

3) бути міцним у вузлі, не мати гігроскопічних властивостей і не набухати;

4) бути біологічно сумісним з живими тканинами і не чинити алергічного впливу на організм;

5) руйнація ниток має збігатися з термінами загоєння рани. Нагноєння ран відбувається значно рідше при використанні

шовних матеріалів, що мають антимікробну активність за рахунок введених в їх структуру протимікробних препаратів (летилан-лавсанові, фторлонові, ацетатні та інші нитки, що містять нітро-фуранові препарати, антибіотики тощо). Синтетичні нитки, що містять антисептичні засоби, мають всі переваги шовних матеріалів як таких і в той же час мають антибактеріальну дію.

Шовний матеріал стерилізують γ-випромінюванняму заводських умовах. Атравматичний шовний матеріал випускають та стерилізують у спеціальній упаковці, звичайний матеріал – в ампулах. Атравматичні нитки в упаковці та ампульовані мотки шовку, кетгуту, капрону зберігають за кімнатної температури і використовують при необхідності. Металевий шовний матеріал (дріт, дужки) стерилізують в автоклавіабо кип'ятінням,лляні або бавовняні нитки, нитки з лавсану, капрону - в автоклаві. Капрон, лавсан, льон, бавовна можна стерилізувати за способом Кохера.Це вимушений метод, і він передбачає попереднє ретельне механічне очищення шовного матеріалу гарячою водою з милом. Мотки миють у мильній воді протягом 10 хв, двічі змінюючи воду, потім відмивають від миючого розчину, висушують стерильним рушником і намотують на спеціальні скляні котушки, які поміщають у банки з притертою пробкою і заливають діетиловим ефіром на 24 год для знежирення, у банки з 70% спиртом на такий самий термін. Після вилучення зі спирту шовк кип'ятять протягом 10-20 хв в розчині дихлориду ртуті 1:1000 і перекладають в банки, що герметично закриваються, з 96% спиртом. Через 2 доби проводять бактеріологічний контроль, при негативному результаті сівби матеріал готовий до застосування. Синтетичні нитки можна стерилізувати кип'ятінням протягом 30 хв.

Стерилізація кетгуту.

У заводських умовах кетгут стерилізують -променями, в основному саме такі нитки використовують у хірургії. Однак можна простерилізувати кетгут у лікарняних умовах, коли неможливо використовувати матеріал, стерилізований в заводських умовах. Стерилізація кетгуту хімічним способом передбачає попереднє знежирення, для чого згорнуті кільцями нитки кетгуту поміщають у банки, що герметично закриваються, з діетиловим ефіром на 24 ч. При стерилізації по Клаудіусудіетиловий ефір з банки зливають, кільця кетгуту заливають на 10 діб водним розчином Люголя (йоду чистого - 10 г, йодиду калію - 20 г, дистильованої води - до 1000 мл), потім замінюють розчин Люголя свіжим і залишають у ньому кетгут. . Після цього розчин Люголю заміняють 96% спиртом. Через 4-6 діб роблять посів на стерильність.

Метод Губарєвапередбачає стерилізацію кетгуту спиртовим розчином Люголя (чистого йоду та йодиду калію – по 10 г, 96% розчин етанолу – до 1000 мл). Після знежирення діетиловий ефір зливають і заливають кетгут розчином Люголя на 10 діб, після заміни розчину на новий кетгут залишають у ньому ще на 10 діб. Після бактеріологічного контролю за сприятливих результатів дозволяють використання матеріалу.

Стерилізація протезів, конструкцій, матеріалів, що зшивають.

Метод стерилізації за умов лікарні визначається видом матеріалу, з якого виготовлений імплантат. Так, металеві конструкції (скріпки, дужки, дріт, пластинки, штифти, цвяхи, гвинти, шурупи, спиці) стерилізують при високій температурі в сухожаровій шафі, автоклаві, кип'ятінням (як неріжучі хірургічні інструменти). Протези складної конструкції, що складаються з металу, пластмас (клапани серця, суглоби) стерилізують за допомогою хімічних антисептичних засобів (наприклад, в розчині хлоргексидину) або в газових стерилізаторах.

Профілактика імплантаційної інфекції при трансплантації органів прокуратури та тканин передбачає взяття органів у стерильних умовах, тобто. наближених до роботи операційних. Ретельне дотримання асептики при цьому передбачає підготовку рук та одягу хірургів, стерильну операційну білизну, обробку операційного поля, стерилізацію інструментів тощо. Орган, витягнутий у стерильних умовах (після промивання його стерильним розчином, а при необхідності відмивання судин від крові та проток - від біологічних рідин), поміщають у спеціальний стерильний герметичний контейнер, обкладений льодом, і доставляють до місця трансплантації.

Протези з лавсану, капрону та інших синтетичних матеріалів (судини, клапани серця, сітку для зміцнення черевної стінки при грижі перетину та ін) стерилізують кип'ятінням або поміщаючи їх в антисептичні розчини. Протези, стерилізовані в розчині антисептика, слід ретельно промивати стерильним ізотонічним розчином натрію хлориду перед імплантацією їх в організм людини.

АНТИСЕПТИКА

Розрізняють механічну, фізичну, хімічну та біологічну антисептику.

Механічна антисептика

Основа механічної антисептики - видалення з інфікованої, гнійної рани, гнійного вогнища нежиттєздатних тканин, гною, фібрину, що є довкіллям і живлення мікробної флори. Видалення девіталізованих тканин, хоч і є не прямою, а опосередкованою дією на мікрофлору, сприяє стерилізації рани.

Варіанти механічної антисептики передбачають первинну хірургічну обробкуінфікованих ран, метою якої є висічення країв, стінок та дна рани в межах здорових тканин (див. Рани).Разом з тканинами, що висікаються, з рани видаляють крововиливи, гематоми, згустки крові, сторонні мікротіла, а також мікрофлору, що знаходиться в них. Чим раніше виконано таку операцію, тим більша ймовірність добитися стерильності рани.

Якщо ж в інфікованій рані почала розвиватися мікробна флора, що можливо при несвоєчасній або неповній первинній хірургічній обробці, або рана з самого початку має гнійний характер (після розкриття абсцесів, флегмон), застосовують вторинну хірургічну обробкурани. Висічення країв, стінок, дна рани при цьому не виробляють, а видаляють з неї механічним шляхом (скальпелем, ножицями, вакуумуванням, промиванням струменем рідини під тиском) некротизовані тканини, гній, фібрин, розкривають гнійні кишені, евакуюють затіки. При цьому видаляється також мікробна флора і, хоча стерильності рани досягти не вдається, кількість мікрофлори в ній зменшується і створюються сприятливі умови для загоєння рани.

Будь-яка перев'язка рани має елементи механічної антисептики. (Туалет рани).Видалення просочених кров'ю, гноєм пов'язок, тампонів, промивання рани струменем рідини, видалення некротизованих тканин, що вільно лежать, секвестрів, просушування рани кульками і тампонами сприяють видаленню з неї мікробної флори, кількість якої зменшується в 10-20 разів.

Фізична антисептика

Методи фізичної антисептики ґрунтуються на використанні законів капілярності, гігроскопічності, дифузії, осмосу, принципу сифону, впливу енергії лазера, ультразвуку.

Дренуванняран, гнійних вогнищ (абсцесів, емпієм) передбачає створення умов для відтоку ранового відділення у зовнішнє середовище (у пов'язку, спеціальний посуд з антисептичними розчинами). Як дренаж при лікуванні ран застосовують марлевий тампон. Тампони різних розмірів готують із смужки марлі і рихло вводять у рану. Завдяки своїй гігроскопічності тампон всмоктує кров, ексудат, гній. Які дренують його властивості виявляються до 8 год, після чого він може перетворитися на «пробку», що закупорює рану і порушує відтік ексудату з неї. Щоб підвищити дрінуючі властивості пов'язки, тампони змочують гіпертонічним(5-10%) розчиномхлориду натрію. Це сприяє створенню високого осмотичного тиску, що призводить до збільшення відтоку рідини з рани пов'язку.

Крім звичайного тампона, застосовують тампон фон Микулича-Радецького.У рану вводять велику марлеву серветку з ниткою, пришитою до її середини. Серветку укладають на дно та стінки рани, утворюється «мішок», який заповнюють марлевими тампонами. Коли тампони просочуються рановим відділяється, їх видаляють, залишаючи марлеву серветку, і утворену порожнину заповнюють новими тампонами. Тампони змінюють кілька разів - до припинення відтоку гнійного відокремлюваного, після чого потягуванням за нитку видаляють серветку.

Дренування можна проводити за допомогою гумових, хлорвінілових та інших трубок різного діаметру, які вводять у рану, порожнину абсцесу, суглоба (при гнійному артриті), плеври (при гнійному плевриті), черевну порожнину (при гнійному перитоніті). Гній, що утворюється, продукти розпаду тканин, а з ними і мікроорганізми по одному або декільком дренажам виділяються в пов'язку. Дренаж може бути з'єднаний трубкою з судиною, в яку наливають якийсь антисептичний розчин; тоді ранове відділення виділятиметься в судину, зменшуючи тим самим забруднення пов'язки. Через дренаж у рану чи гнійну порожнину вводять хімічні антисептичні засоби, антибіотики, протеолітичні ферменти.

Для більш ефективного промивання ран і гнійних порожнин в них (крім дренажу для відтоку ранового відділяється) вставляють іншу трубку, по ній вводять розчин антибактеріального препарату, разом з яким продукти розпаду тканин, гній, кров і фібрин видаляються з рани по дренажу (мал. 8 ). Таким чином, комбінуючи методи фізичної та хімічної антисептики, створюють умови для проточно-промивного дренуванняЦей метод застосовують також при лікуванні гнійного плевриту та перитоніту. Для підвищення ефективності методу як промивний розчин використовують протеолітичні ферменти, які сприяють більш швидкому розплавленню нежиттєздатних тканин, гною, фібрину (метод проточного ферментативного діалізу).

Якщо дренована порожнина герметична (рана, зашита швами, емпієма плеври, гнійний артрит, порожнина абсцесу), застосовують активну аспірацію (вакуумне дренування).Розрідження в системі може бути створене за допомогою шприца Жане, яким видаляють повітря з герметичної банки з підключеним до неї дренажем, або за допомогою водоструминного відсмоктування або трибанкової системи. Це найбільш ефективний метод дренування, він також сприяє зменшенню порожнини рани, швидшому її закриттю та ліквідації запалення, а при емпіємі плеври - розправленню підтисненого ексудатом легені.

Асептичні умови в рані можна створити, помістивши кінцівку з раною або хворого (при великих опіках) в спеціальну камеру, в якій за допомогою установки, показаної на рис. 9, створюють бактеріальне середовище.

Лазерне випромінюванняу вигляді променя малої потужності має бактерицидний ефект і не надає шкідливого впливу на тканини. Застосовують в основному вуглекислотний лазер, сфокусований промінь якого випаровує на некротизовані тканини і мікроорганізми. На стінках та дні рани утворюється дуже тонка коагуляційна плівка, що перешкоджає проникненню в тканини мікроорганізмів та їх токсинів. Використовують лазерне випромінювання на лікування ран.

Бактерицидний вплив має ультразвук низької частоти.У рідкому середовищі (рані, замкнутої порожнини) УЗ виявляє фізичні та хімічні властивості. У середовищі, що зазнала впливу УЗ, створюється ефект кавітації - виникають ударні хвилі у вигляді коротких імпульсів з утворенням бульбашок кавітації. Одночасно під впливом УЗ відбувається іонізація води з утворенням Н+ і ОН - , під впливом чого в мікробній клітині припиняються окислювально-відновні процеси. УЗ-кавітацію застосовують для обробки ран.

Хімічна антисептика

Зниження ефективності антибіотиків в організмі визначається низкою умов:

• низька концентрація препарату в осередку запалення внаслідок недостатності проникнення його в тканини через низьку органотропність або розлад мікроциркуляції;
• інактивація препарату медіаторами та продуктами запалення внаслідок порушення окисно-відновних процесів, зміни рН, впливу продуктів запалення та загибелі тканин;
• вплив різних лікарських препаратів, що використовуються в комплексному лікуванні, через прямий антоганізм або порушення фармакокінетики антибіотиків.

Хімічні антисептики- Речовини, які використовуються для місцевого застосування, що дозволяють створити високу концентрацію антибактеріального препарату безпосередньо в осередку гнійного запалення. Препарати стійкіші до впливу продуктів запалення чи некрозу тканин, ніж антибіотики. Антибактеріальну активність антисептиків підвищує використання інших засобів та методів антисептики - фізичних факторів (дренування, УЗ, енергії лазера, плазми), некролітично-протеолітичних ферментів, гіпохлориту натрію, біологічних (бактеріофагів) та ін.

Позитивними якостями антисептиків є широкий антибактеріальний спектр їхньої дії, в основному бактерицидний ефект, відносно низька стійкість лікарських мікроорганізмів до них з невеликою поширеністю цих форм. Препарати відрізняє погана всмоктування, стабільність при тривалому зберіганні, рідкісні побічні дії (дратівлива та алергічна).

Похідні нітрофурану.Препарати ефективні щодо гнійної кокової флори.

Нітрофуралзастосовують у водних розчинах 1:5000 для промивання гнійних ран під час перев'язки, порожнини абсцесу та емпієми - через дренажі (наприклад, при гнійному плевриті, гнійному свищі при остеомієліті) та ін.

Фуразідінвикористовують у вигляді 0,1% розчину для тих же цілей, що й нітрофурал. Препарат можна застосовувати внутрішньовенно в дозі 300 мл.

Нітрофурал входить до складу плівкоутворювального препарату «ліфузоль» (Lifusolum),який випускається у вигляді аерозолю та застосовується для лікування поверхневих ран, опіків. Він утворює на рани захисну плівку з антимікробним ефектом. Плівка зберігається протягом 5-7 днів.

Група кислот.Для промивання ран, гнійних порожнин або гнійних нориць використовують 2-3% водний розчин борної кислоти. (Acidum boricum).

Кислота саліцилова (Acidum salicylicum)має антибактеріальну та кератолітичну дію. Застосовують як присипок, мазей, 1% і 2% спиртових розчинів.

Окислювачі.До цієї групи належать пероксид водню і перманганат калію, які при з'єднанні з органічними речовинами виділяють атомарний кисень, що має антимікробний ефект.

Розчин пероксиду водню (Solutio Hydrogeniiperoxydi diluta)застосовують у вигляді 3% водного розчину під час перев'язок, для промивання гнійних ран, гнійних нориць, емпієм, абсцесів. Рясна піна, що утворюється при промиванні, сприяє видаленню з рани гною, фібрину, некротизованих тканин. Має дезодоруючу властивість.

Сечовини пероксид (Hydroperitum)комплексний препарат пероксиду водню та сечовини. Випускається у таблетках. Для промивання ран використовують 1% розчин (100 мл води розчиняють 2 таблетки).

Калію перманганат (Kaliipermanganas)застосовують при лікуванні гнійних ран (0,1-0,5% розчин), опіків (2-5% розчин), для промивання порожнин (0,02-0,1% розчин).

Барвники.

Діамантовий зелений (Viride nitens)використовують у вигляді 1-2% спиртового або водного розчину для змащування поверхневих ран, саден, лікування гнійних захворювань шкіри.

Метилтіонінія хлоридзастосовують для змащування поверхневих ран та саден (3% спиртовий розчин), лікування опіків (1-2% спиртовий розчин) та промивання гнійних порожнин (0,02% водний розчин).

Детергенти.Хлоргексидин (Chlorgexidinum)є 20% водний розчин хлоргексидину біглюконату. Для промивання ран готують розчин 1:400 для промивання порожнин тіла при гнійному запаленні - 1:1000; 1 мл 20% розчину хлоргексидину розводять відповідно в 400 і 1000 мл дистильованої води. Вираженою антибактеріальною дією має бензилдиметил-миристоіламіно-пропіламоній. Спектр дії, як і у хлоргексидину, – аероби, анаероби, гриби. Застосовують 0,01% розчин.

Похідні хіноксіксаліну.Гідроксиметилхіноксіліндіоксидволодіє широким спектром антибактеріальної дії: ефективний щодо кишкової та синьогнійної палички, вульгарного протею, збудників газової гангрени. Застосовують як 0,5-1% розчину.

Електрохімічні розчини.Гіпохлорит натрію 003-012%. Спектр дії – аероби, анаероби, гриби.

Способи застосування хімічних антисептиків

Місцеве застосуванняхіміотерапевтичних засобів: а) використання пов'язок з антисептичними препаратами при лікуванні ран та опіків; препарати можуть застосовуватися у вигляді розчинів (ними промивають рану під час перев'язки, змочують тампони), мазей і порошків; б) введення розчинів антибактеріальних препаратів у рану, закриті порожнини з подальшою аспірацією через дренажі - промивання, проточне дренування (поєднання фізичної та хімічної антисептики); прикладом комбінованого застосування фізичної та хімічної антисептики є перитонеальний діаліз при гнійному перитоніті, проточне дренування плевральної порожнини при гнійному плевриті; в) для санації черевної порожнини застосовують препарати, допустимі для внутрішньовенного введення (гідроксиметилхіноксіліндіоксид, гіпохлорит натрію, фуразидин).

Загальне застосуванняхіміотерапевтичних засобів включає: а) прийом антибактеріальних препаратів внутрішньо (у вигляді таблеток) з метою місцевого впливу на мікрофлору шлунково-кишкового тракту при підготовці хворих до операції на кишечнику та загальної дії на організм після всмоктування препарату в кров; б) внутрішньовенне введення деяких хіміотерапевтичних препаратів (гідроксиметилхіноксіліндіоксида, фуразідин, гіпохлориту натрію).

Біологічна антисептика

Біологічна антисептика передбачає використання засобів біологічної природи боротьби з інфекцією в людини. Діапазон препаратів надзвичайно широкий, шляхи їх застосування та спрямованість дії різні. Умовно їх можна розділити на препарати для місцевого та загального антибактеріального впливу. До групи біологічних антисептиківвідносять препарати, здатні активізувати антимікробні захисні фактори організму (імунітет). Це можуть бути як препарати специфічної прямої антимікробної дії (введення готових специфічних антитіл – засобів пасивної імунізації), так і препарати, що стимулюють вплив антитіл. Засоби імунного захисту стимулюють також неспецифічні імунні реакції - синтез в організмі клітинних факторів імунітету.

Антибіотики

Серед антибактеріальних препаратів важливе місце посідають антибіотики.Застосування в сучасних умовах становить значні труднощі, що з зміною видового складу та властивостей мікробної флори — поширенням мікроорганізмів з лікарської стійкістю. Основні збудники гнійно-запальних захворювань (стафілококи та грамнегативні бактерії — кишкова паличка, протей, синьогнійна паличка та ін.) набули високого ступеня антибіотикорезистентності та навіть антибіотикозалежності внаслідок мутагенної дії антибіотиків. Серед збудників гнійно-запальних захворювань певне місце займають умовно-патогенні мікроорганізми — неспороутворюючі (неклостридіальні) анаероби та головним чином бактероїди, що відрізняються природною стійкістю до більшості антибіотиків.

Основними антибіотиками, застосування яких показано для лікування та профілактики запальних захворювань, є такі.

Пеніциліни.Одним з найактивніших є бензилпеніцилін (природний антибіотик). Напівсинтетичні пеніциліниподіляють на дві групи: 1) пеніцилінозастійкі (наприклад, оксацилін), активні щодо грампозитивної мікробної флори; їх застосовують при стафілококовій інфекції різної локалізації: пневмонії, абсцесі, емпіємі плеври, остеомієліті, абсцесі та флегмоні м'яких тканин, при ранах; 2) напівсинтетичні пеніциліни широкого спектра дії: ампіцилін, карбеніцилін; ці препарати ефективні при лікуванні опіків, ранової інфекції.

Цефалоспорини.До цієї групи належать цефазолін, цефалексин – цефалоспорини І та ІІ покоління; препарати ІІІ покоління – цефотаксим, цефтазидим, цефтріаксон; IV покоління - цефепім.

Аміноглікозиди.До них відносяться гентаміцин, канаміцин, сізоміцин, тобраміцин, амікацин (напівсинтетичний аміноглікозид). Препарати мають ото- та нефротоксичну дію.

Макроліди(еритроміцин, олеандоміцин, азитроміцин).

Тетрацикліни.Ця група включає тетрациклін, окситетрациклін, напівсинтетичні тетрацикліни – доксициклін.

Фторхінолони(Офлоксацин, ципрофлоксацин, левофлоксацин).

Карбопенеми:іміпенем+циластатин, меропенем.

Лінкозаміни(Лінкоміцин).

Глікопептиди(Ванкоміцин).

Антибіотиками широкого спектра, що впливають як на грамнегативну, так і на грампозитивну флору, є напівсинтетичні пеніциліни, цефалоспорини, аміноглікозиди, фторхінолони.

Протеолітичні ферменти

Протеолітичні ферменти належать до засобів біологічної антисептики. Вони мають здатність лізувати (розплавляти) некротизовані тканини, фібрин, гній, мають протинабряковий вплив і посилюють лікувальний ефект антибіотиків. Відомі ферментні препарати тваринного походження- трипсин, хімотрипсин, рибонуклеазу, колагеназу; бактеріального -терилітин, стрептокіназа, аспераза, іруксол (мазь для ферментативного очищення ран; містить клострадилпептидазу - фермент протеолітичної дії, виділений з Clostridium histolyticum,та хлорамфенікол); рослинного -папаїн, бромелаїн.

Ферментні препарати

Ферментні препарати протеолітичної дії застосовують місцевопри лікуванні гнійних ран, трофічних виразок у вигляді розчину чи порошку. На рану чи виразку, оброблену розчином пероксиду водню чи нітрофуралу, накладають серветки, змочені розчином ферментів; при рясному раневом рані, що відокремлюється, засипають порошком. Деякі ферменти застосовують у мазях (іруксол, аспераза). Препарати використовують до повного очищення ран або виразок від некротизованих тканин та гною. Дози препаратів вказані в інструкції щодо їх застосування.

Розчини ферментів використовують для внутрішньопорожнинного введення:у плевральну порожнину (при гнійному плевриті), порожнину суглоба (при гнійному артриті), порожнину абсцесу. Препарати вводять шляхом пункції порожнин або через дренажні трубки після попереднього видалення гною аспірацією. При абсцесі легені, якщо він не дренується через бронхи, здійснюють пункцію абсцесу через грудну стінку з введенням у порожнину розчину ферментів. У порожнину абсцесу легкого ферменти можна доставляти через катетер чи бронхоскоп. При остеомієліті ферменти вводять у кістковомозковий канал або кісткову порожнину шляхом пункції голки або через дренажі, встановлені під час операції. Гнійні нориці промивають розчином ферментів. При гнійних захворюваннях легень проводять інгаляціїпротеолітичних ферментів за допомогою інгаляторів

При лікуванні запальних інфільтратів застосовують електрофорезферментів. Для цих цілей використовують трипсин або хімотрипсин.

Як протизапальні засоби протеолітичні ферменти (трипсин, хімотрипсин) ін'єктують внутрішньом'язовоу дозі 0,07 мг/кг.

Протеолітичні ферменти разом із розчином прокаїну можуть застосовуватися для інфільтрації тканин при початкових формах запалення або входити до складу розчинів для прокаїнових блокад.Так, при початкових формах маститу виконують ретромаммарну блокаду (див. Місцева анестезія),в ретромамарний простір вводять 70-80 мл 0,25% розчину прокаїну, 10 мг хімотрипсину або трипсину і 500 000 ОД канаміцину.

Бактеріофаги

Для боротьби з мікроорганізмами в організмі людини застосовують вірус бактерій — бактеріофаг, здатний репродукуватись у бактеріальній клітині та викликати її лізис.

Бактеріофаги відрізняються специфічною дією. Використовують антистафілококовий, антистрептококовий бактеріофаги, бактеріофаг-антиколі. Полівалентний бактеріофаг містить кілька фагів, і його застосовують, якщо збудник захворювання невідомий. Після обстеження та виявлення збудника призначають специфічний бактеріофаг. Бактеріофаги використовують для зрошення гнійних ран, інфільтрації тканин, що оточують рану, введення в гнійні порожнини через дренажі та мікроіригатори. При гнійних захворюваннях легенів бактеріофаг вводять ендотрахеально або безпосередньо в порожнину абсцесу шляхом його пункції через грудну стінку. При сепсисі специфічний бактеріофаг ін'єктують внутрішньовенно.

Імунні засоби

Для активної імунізації застосовують анатоксини. Стафілококовий анатоксинвводять підшкірно по 0,1 мл в лопаткову область, потім через кожні 2-3 дні повторюють ін'єкцію, збільшуючи дозу на 0,1 мл, поступово її доводять до 1 мл. В екстрених випадках перед операцією вводять 0,5 мл стафілококового анатоксину.

правцевий анатоксинзастосовують для планової та екстреної профілактики правця. Ін'єкцію препарату в екстрених випадках поєднують з профілактичною дозою протиправцевої сироватки (див. Рани).

Для пасивної імунізації застосовують препарати, що містять антитіла до тих чи інших збудників хірургічної інфекції.

Антистафілококова гіперімуна плазмає нативною (рідкою або замороженою) плазмою крові донорів, імунізованих адсорбованим стафілококовим анатоксином. Титр антистафілококової плазми має бути не менше 6 ME. Застосовують плазму з розрахунку 4-6 мл/кг, вводять внутрішньовенно при тяжких інфекційних захворюваннях, викликаних стафілококами (сепсис, гнійний перитоніт, остеомієліт та ін). Препарат вводять одноразово або повторно залежно стану хворого.

Для цілеспрямованої імунотерапії застосовують антисинегнійну, антиколібацилярну гіперімунну плазму,містить відповідні антитіла.

Антистафілококовийγ -глобулінвиготовляють із крові донорів, імунізованих адсорбованим стафілококовим анатоксином. В 1 мл препарату міститься 20-50 ME антистафілококового антитоксину. Випускається у стерильному вигляді у запаяних ампулах. Одна лікувальна доза препарату становить 100 ME антитоксин. Застосовують антистафілококовий γ-глобулін для лікування та профілактики захворювань стафілококової природи - сепсису, перитоніту, плевриту, остеомієліту та ін. Препарат вводять внутрішньом'язово.

Імуноглобулін людський нормальнийліофілізований полівалентний імуноглобулін людини Препарат має широкий набір антитіл проти бактерій, вірусів та інших збудників. Вводять його внутрішньовенно при тяжких бактеріальних інфекціях, у тому числі при сепсисі, в дозі 0,4-1,0 г/кг щодня протягом 1-4 днів.

Протиправцевийγ -глобулінвиготовляють із крові донорів, імунізованих правцевим анатоксином. Випускається в запаяних ампулах у стерильному вигляді, в 1 мл розчину міститься 150 ME протиправцевих антитіл. Застосовують для профілактики та лікування правця. Препарат вводять внутрішньом'язово. Імунітет зберігається до 1 міс (див. розділ 10).

Протиправцева сироваткаімунна сироватка, отримана з крові тварин (коней), імунізованих правцевим анатоксином. Одна ампула сироватки містить 1500-3000 МО, профілактична доза сироватки - 3000 МО. Одноразове введення профілактичної дози сироватки захищає від правця терміном до 5 днів. Лікувальна доза сироватки перевищує профілактичну вдесятеро. У всіх випадках сироватку вводять з обережністю через небезпеку анафілактичної реакції.

Протигангренозна сироваткаімунна сироватка тварин (коней), що містить антитіла до чотирьох основних збудників газової (анаеробної) гангрени Closotridium perfringens, Cl. oedematiens, Cl. septicum, Cl. histolyticum.Застосовують з профілактичною та лікувальною метою. З профілактичною метою сироватку вводять внутрішньом'язово, з лікувальною – внутрішньовенно з обережностями (через небезпеку алергічних реакцій).

Імуностимулюючі препарати

До імуностимулюючих препаратів, що підвищують неспецифічний імунологічний захист організму, належать продігіозан, лізоцим, левамізол.

Продігіозан -бактеріальний полісахарид, що стимулює лейкопоез, активує Т-систему імунітету, стимулює фагоцитоз. Показанням до його призначення є зниження активності фагоцитозу і пригнічення лейкопоезу, що виявляється у зменшенні кількості лімфоцитів і моноцитів, а за даними імунограми — у зниженні кількості циркулюючих у крові В-лімфоцитів. Препарат призначають по 50 мкг 4 рази на день з інтервалом 3-4 дні.

Левамізолстимулює утворення Т-лімфоцитів, фагоцитів, збільшує синтез антитіл. Препарат (6 разів на добу, через день) призначають при зменшенні кількості Т-лімфоцитів у крові, пригніченні фагоцитозу. Курсова доза становить 150 мг.

Лізоцим -природний гуморальний фактор неспецифічної реактивності діє бактерицидно. Препарат підвищує неспецифічний захист організму, посилює дію антибіотиків.

Тімуса екстракт- Препарат, отриманий з вилочкової залози (тимусу) великої рогатої худоби, стимулює імунологічні процеси - посилює реакцію клітинного імунітету та фагоцитоз, регулює кількість Т-і В-лімфоцитів. При гострих та хронічних гнійних процесах, що супроводжуються зниженням клітинного імунітету, призначають внутрішньом'язово по 10-30 мг тимусу екстракту щодня протягом 5-20 днів, для профілактики післяопераційних гнійно-запальних ускладнень перед операцією вводять протягом 5-7 днів по 10-2 . Препарат розводять ізотоничним розчином хлориду натрію безпосередньо перед ін'єкцією.

Попередження ендогенного інфікування ран

Профілактику інфікування рани під час операції з ендогенних джерел проводять різними методами. Попередити контактне інфікування допомагає ретельне дотримання техніки оперативного втручання: послідовне виконання хірургічних прийомів, ізоляція рани за допомогою серветок, рушників від можливого попадання гною при розтині інфікованого органу (наприклад, товстої кишки), черевної кишки, черевної порожнини (черевної порожнини); міхура у разі їхнього гнійного запалення і т.д. Після «брудного» етапу операції обов'язкова зміна інструментів, серветок, рукавичок, за необхідності операційної білизни.

Щоб зменшити ризик ендогенного інфікування, планові операції відкладають для здійснення санації вогнищ інфекції в організмі (нежить, ангіна, тонзиліт, фарингіт, простатит, аднексит, каріозні зуби, фурункульоз та ін.). У випадках, коли хвороба загрожує життю хворого (кровотечі, травматичні ушкодження та ін.), виконують екстрену операцію, незважаючи на наявність осередків інфекції в організмі, — хірурги змушені йти на ризик задля врятування життя хворого. Щоб зменшити можливість перенесення мікробної флори в зону оперативного втручання, хворому призначають антибактеріальні препарати, насамперед антибіотики, безпосередньо перед операцією, під час неї та після закінчення з метою впливу на вогнище інфекції та підтримання в крові концентрації препарату, необхідної для знищення мікробів, що проникли. в кров із осередку запалення. Цим блокується гематогенний шлях інфікування. Вживають обов'язкових заходів щодо запобігання контактному інфікуванню під час операції, якщо осередок хронічної інфекції знаходиться в зоні операції.

До введення методів асептики та антисептики післяопераційна смертність досягала 80%: хворі вмирали від гнійних, гнильних та гангренозних процесів. Відкрита в 1863 р. Луї Пастером природа гниття і бродіння, ставши стимулом розвитку мікробіології та практичної хірургії, дозволила стверджувати, що причиною багатьох ранових ускладнень також є мікроорганізми.

У цьому рефераті будуть розглянуті такі методи знезараження як асептика та антисептика.

Ці поняття слід розглядати в комплексі заходів, що доповнюють один одного, одне без іншого не матиме найкращого результату.

Асептика - метод хірургічної роботи, що забезпечує попередження попадання мікробів в операційну рану чи розвитку в ній. На всіх навколишніх людини предметах, у повітрі, у воді, на поверхні його тіла, у вмісті внутрішніх органів і т.д. є бактерії. Тому хірургічна робота вимагає дотримання основного закону асептики, який формулюється так: все, що приходить у дотику до рани, має бути вільно від бактерій, тобто. стерильно.

АНТИСЕПТИКА

Антисептика має на увазі комплекс заходів, спрямованих на знищення мікробів на шкірі, рані, патологічній освіті або організмі в цілому. Виділяють фізичну, механічну, хімічну та біологічну антисептику.

При фізичній антисептиці забезпечують відтік із рани інфікованого вмісту і цим її очищення від мікробів, токсинів і продуктів розпаду тканин. Досягається це застосуванням тампонів із марлі, дренажів із гуми, скла, пластмаси. Гігроскопічні властивості марлі значно посилюються при змочуванні її гіпертонічними розчинами (5-10% розчин хлориду натрію, 20-40% розчин цукру та ін.).

Застосовують відкриті методи лікування ран без накладення пов'язки, що веде до висушування рани повітрям та створення таким чином несприятливих умов розвитку мікробів. До фізичної антисептики відноситься також використання ультразвуку, лазерних променів, фізіотерапевтичних процедур.

Механічною антисептикою є прийоми видалення з рани інфікованих і нежиттєздатних тканин, що служать основним живильним середовищем для мікроорганізмів. Це операції, що отримали назву активної хірургічної обробки рани, а також туалет рани. Мають велике значення для профілактики розвитку ранової інфекції.

Хімічна антисептика передбачає речовини з бактерицидною або бактеріостатичною дією (наприклад, сульфаніламідні ліки), які мають згубний вплив на мікрофлору.

Біологічна антисептика становить велику групу препаратів та методик, дія яких спрямована безпосередньо проти мікробної клітини та її токсинів, та групу речовин, що діють опосередковано через організм людини. Так, переважно на мікроб або його токсини діють: 1) антибіотики – речовини з вираженими бактеріостатичними чи бактерицидними властивостями; 2) бактеріофаги; 3) антитоксини, що вводяться, як правило, у вигляді сироваток (протиправцева, протидифтерійна та ін).

Опосередковано через організм, підвищуючи його імунітет і тим самим посилюючи захисні властивості, діють вакцини, анатоксини, переливання крові та плазми, запровадження імунних глобулінів, препаратів метилтіоурацилу та ін.

Протеолітичні ферменти лізують мертві та нежиттєздатні тканини, сприяють швидкому очищенню ран та позбавляють мікробні клітини поживних речовин. За спостереженнями ці ферменти, змінюючи довкілля мікробів і руйнуючи їх оболонку, можуть робити мікробну клітину більш чутливою до антибіотиків.

Біологічна антисептикапередбачає використання засобів біологічного походження, і навіть впливом геть імунну систему макроорганізму. на мікроби ми надаємо переважну, а на імунну систему стимулюючу дію. Найбільша група засобів біологічного походження - антибіотики, як правило, це продукти життєдіяльності грибків різних видів. Деякі їх застосовують у незміненому вигляді, деякі піддаються додаткової хімічної обробці (напівсинтетичні препарати), існують також синтетичні антибіотики. Антибіотики поділяються на різні групи, особливо широко застосовується група пенциліннов, запропонована ще в 30-ті роки Флемінгом, а у нас цей препарат був синтезований групою Єрмольєвої академіка. Введення пеніциліну в медичну практику викликало революцію у медицині. Тобто хвороби, які були фатальними для людини, скажімо, пневмонія, від якої вмирали мільйони людей у ​​всьому світі, стали піддаватися успішному лікуванню. У хірургії значно рідше стали траплятися гнійні ускладнення. Однак неправильне вживання пеніциліну протягом 20 років призвело до того, що вже у 50-ті роки медики його повністю скомпрометували. Це сталося тому, що не враховувалися суворі показання до застосування пеніциліну; призначали пеніцилін при грипі, щоб уникнути ускладнень - пневмонії, викликаної стафілококами або пневмококами. Або хірурги, роблячи операцію з приводу пахвинної грижі, призначали антибіотики, щоб уникнути гнійних ускладнень. В даний час з профілактичною метою застосовувати антибіотики не можна, за винятком випадків екстреної профілактики. Друга обставина - те, що його призначали в низьких дозах. В результаті не всі мікроби піддавалися впливу пеніциліну, а мікроби, що вижили після застосування пеніциліну, починали виробляти захисні механізми. Найбільш відомий захисний механізм – це вироблення пеніциліназ – ферменти, який руйнує пеніцилін. Ця властивість характерна для стафілококів. Мікроби стали включати антибіотики тетрациклінового ряду до свого метаболічного циклу. Виробилися штами, які здатні жити лише у присутності цих антибіотиків. Деякі мікроби перебудували рецептори своїх клітинних мембран в такий спосіб, ніж сприймати молекули антибіотиків.

У 60-ті роки з'явилася нова група антибіотиків – протигрибкові антибіотики. Справа в тому, що в результаті масштабного застосування антибіотиків у людей стали спостерігатися пригнічення власної мікрофлори товстої кишки, пригнічується кишкова паличка, а вона життєво необхідна людині, наприклад, засвоєння вітамінів (К, В12). Нещодавно було виявлено ще один механізм взаємодії організму людини з кишковою паличкою: кишкова паличка всмоктується в судини кишкових ворсин і за мезентеріальними венами потрапляє у ворітну вену, а далі в печінку і там убиваються купферівськими клітинами. Така бактеріємія у складі крові ворітної вени має значення підтримки постійного тонусу імунної системи. Так при придушенні кишкової палички порушуються ці механізми. Таким чином, антибіотики знижують активність імунної системи.

Внаслідок того, що нормальна мікрофлора, що пригнічується антибіотиками, може розвиватися зовсім незвичайна для здорової людини мікрофлора. Серед цієї мікрофлори на першому місці – грибки роду Кандіда. Розвиток грибкової мікрофлори призводить до виникнення кандидмікозу. У нас у місті щорічно спостерігаються 10-15 випадків сепсису, викликаного канідомікозом. Саме тому з'явилася група антигрибкових антибіотиків, які рекомендується застосовувати при дисбактеріозах. До цих антибіотиків відноситься леворин, ністатин, метрагіл та ін.

АСЕПТИКА

Метод хірургічної роботи, що забезпечує попередження попадання мікробів в операційну рану чи розвитку в ній. На всіх навколишніх людини предметах, у повітрі, у воді, на поверхні його тіла, у вмісті внутрішніх органів і т.д. є бактерії. Тому хірургічна робота вимагає дотримання основного закону асептики, який формулюється так: все, що приходить у дотику до рани, має бути вільно від бактерій, тобто. стерильно.

АСЕПТИКА - це комплекс профілактичних хірургічних заходів, спрямованих на попередження потрапляння інфекції в рану. Цього можна досягти шляхом стерилізації всього того, що з нею стикається. Асептику запропонував німецький хірург Бергман. Це сталося на 9-му конгресі хірургів у Берліні. Бергман запропонував фізичні методики знезараження - кип'ятіння, випалювання, автоклавування.

Асептика та антисептика є єдиним комплексом заходів, їх не можна розділити.

За джерелом інфекції ділять на екзогенні та ендогенні. Шляхи проникнення ендогенної інфекції: лімфогенний, гематогенний, міжклітинними просторами, особливо пухкої тканини, контактний (наприклад, з хірургічним інструментом). Для хірургів особливої ​​проблеми ендогенна інфекція не становить, на відміну екзогенної. Залежно від шляху проникнення екзогенна інфекція поділяється на повітряну краплинну, контактну та імплантаційну. Повітряна інфекція: так мікробів у повітрі небагато, ймовірність повітряного зараження невелика. Пил збільшує ймовірність виникнення зараження з повітря. В основному, заходи боротьби з повітряними інфекціями зводяться до боротьби з пилом і включають провітрювання і ультрафіолетове опромінення. Для боротьби з пилом застосовується збирання. Є 4 види прибирання:

1. попередня полягає в тому, що з ранку до початку операційного дня протирається всі горизонтальні поверхні серветкою, змоченою 0.5% розчином хлораміну.

2. поточне прибирання проводиться в ході операції і полягає в тому, що все, що падає на підлогу, негайно забиралося.

3. заключне прибирання - після операційного дня і складається з миття підлог і всього устаткування 0.5% розчином хлораміну і включення ультрафіолетових ламп. Стерилізувати повітря за допомогою таких ламп неможливо, а застосовуються вони на місці найбільших джерел інфікування.

4. Провітрювання – дуже ефективний метод – після нього забрудненість мікробами падає на 70-80%.

Дуже довго вважалося що повітряна інфекція не є небезпечною при операціях, проте з розвитком трансплантації із застосуванням імунодепресантів операційні стали ділити на 3 класи:

1. перший клас - трохи більше 300 мікробних клітин на 1 кубічному метрі повітря.

2. Другий клас - до 120 мікробних клітин - цей клас призначений для серцево-судинних операцій.

3. Третій клас – клас абсолютної асептики – не більше 5 мікробних клітин у кубічному метрі повітря. Цього можна досягти в герметичній операційній, з вентиляцією та стерилізацією повітря, зі створенням усередині операційної зони підвищеного тиску (щоб повітря прагнуло з операційних назовні). А також встановлюються спеціальні двері-шлюзи.

Крапельна інфекція - це ті бактерії, які можуть виділятися в повітря з дихальних шляхів, всіх, хто знаходиться в операційній. Мікроби виділяються з дихальних шляхів з водяною парою, водяна пара конденсується і разом з цими крапельками мікроби можуть потрапляти в рану. Щоб зменшити небезпеку поширення краплинної інфекції в операційній, не повинно бути зайвих розмов. Хірурги повинні користуватися 4-ма шаровими масками, які зменшують ймовірність інфікування крапельною інфекцією на 95%.

Контактна інфекція - це всі мікроби, які здатні проникати в рану з будь-яким інструментарієм, з усім тим, що стикається з раною. Перев'язувальний матеріал: марля, вата, нитки переносить високу температуру, тому не повинна бути меншою за 120 градусів, експозиція повинна становити 60 хвилин.

Контроль стерильності. Існує 3 групи способів контролю:

1. Фізичний: береться пробірка, куди насипають якусь речовину, що плавиться при температурі близько 120 градусів – сірка, бензойна кислота. Недолік цього способу контролю полягає в тому, що ми бачимо, що порошок розплавився і значить необхідна температура досягнута, але ми не можемо бути впевнені, що вона була такою протягом усього часу експозиції.

2. Хімічний контроль: беруть фільтрувальний папір, поміщають його в розчин крохмалю, після чого занурюють у розчин Люголю. Вона набуває темно-бурого кольору. Після експозиції в автоклаві крохмаль при температурі понад 120 градусів руйнується, папірець знебарвлюється. Метод має той самий недолік як і фізичний.

3. Біологічний контроль: це найнадійніший метод. Беруть зразки матеріалу, що стерилізувався і сіють на живильні середовища, не знайшли мікробів - значить все в порядку. Знайшли мікроби – отже необхідно повторно провести стерилізацію. Недоліком методу є те, що відповідь ми отримуємо лише через 48 годин, а матеріал вважається стерильним після автоклавування в біксі протягом 48 годин. Отже, матеріал використовується ще до відповіді з бактеріологічної лабораторії.

Останніми роками почали застосовувати переважно хімічні методи обробки рук: широко поширена обробка рук першомуром. Цей метод надзвичайно надійний: сік, що утворився протягом 12 годин, після того як одягли рукавички (в експерименті) залишався стерильним.

ОСНОВНІ ПРИНЦИПИ РАЦІОНАЛЬНОЇ АНТИБІОТИКОТЕРАПІЇ

1. Цілеспрямоване застосування антибіотиків: за суворими показаннями, у жодному разі для профілактичної мети

2. Знання збудника. Результати бактеріологічного дослідження з'являються лише через 12 годин, а людину треба лікувати зараз. Кожен третій випадок хірургічної інфекції викликаний не монокультурою, а одразу багатьма збудниками. Їх може бути 3-8 і більше. У цій асоціації будь-який з мікробів є лідируючим і найбільш патогенним, а інші можуть бути попутниками. Все це ускладнює ідентифікація збудника, тому в основу необхідно ставити причину захворювання. Якщо людині загрожує тяжке ускладнення чи смерть, тоді необхідно застосовувати антибіотики резерву – цефалоспорини.

3. Правильний вибір дозування та кратності призначення антибіотика, виходячи з підтримки в крові необхідного рівня концентрації антибіотика.

4. Профілактика можливих побічних дій та ускладнень. Найбільш поширена побічна дія – алергія. Перед застосуванням антибіотика має бути поставлена ​​шкірна проба на чутливість до антибіотика. Для того, щоб зменшити небезпеку токсичної дії між антибіотиками. Є антибіотики, які посилюють несприятливу дію один одного. Є антибіотики, що його послаблюють. Для вибору антибіотиків існують таблиці поєднання антибіотиків.

5. Перш ніж розпочинати антибіотикотерапію, треба з'ясувати стан печінки, нирок, серця у пацієнта (особливо при застосуванні токсичних препаратів).

6. Розробка антибактеріальної стратегії: необхідно застосовувати а/б у різних комбінаціях. Одне і теж поєднання застосовувати треба не більше 5-7 днів, у процесі лікування, якщо ефекту не настає, необхідно міняти антибіотик на інший.

7. При захворюванні людини на інфекційну етіологію треба стежити за станом імунної системи. Необхідно застосовувати методики дослідження гуморального і клітинного імунітету, які ми маємо, щоб вчасно виявити дефект в імунній системі.

Є три шляхи впливу на імунітет:

· Активна імунізація, коли вводяться антигени, в хірургії це вакцини, анатоксини.

· Пасивна імунізація сироватками, гама глобуліном.

У хірурги широко застосовується протиправцевий, протистафілококовий гамма-глобуліни, імуномодуляція. Застосування різних стимуляторів імунітету: екстракт алое, аутогемотерапія та ін. методи, але недолік стимулюючої дії в те, що ми діємо наосліп, не на якийсь певний імунний механізм. Поряд із нормальними мають місце і патологічні імунні реакції – аутоімуна агресія. Тому зараз має місце не імуностимуляція, а імуномодуляція, тобто дія лише на дефектну ланку імунітету. Зараз як імуномодулятори використовують різні лімфокіни, інтерлейкіни, інтерферони, препарати, що отримуються з тимусу, що впливають на Т-популяцію лімфоцитів. Можна застосовувати різні екстракорпоральні методики імуномодуляції: ультрафіолетове просвічування крові, гемосорбція, гіпербарична оксигенація і т.п.

СПИСОК ЛІТЕРАТУРИ

1. Бородін Ф.Р.. Вибрані лекції. М: Медицина, 1961.

2. Заблудовський П.Є. Історія вітчизняної медицини. М., 1981.

3. Зеленін С.Ф. Стислий курс історії медицини. Томськ, 1994.

4. Сточник А.М. Вибрані лекції з курсу історії медицини та культурології. - М., 1994.

5. Сорокіна Т.С. Історія медицини. -М., 1994.

АСЕПТИКА(грецький а-негативний +septikos гнійний, що викликає нагноєння) - система профілактичних заходів, спрямованих проти можливості попадання мікроорганізмів у рану, тканини, органи, порожнини тіла хворого (пораненого) при хірургічних операціях, перев'язках, ендоскопії та інших лікувальних та діагностичних маніпулях. Асептика включає:

а) стерилізацію інструментів, матеріалів, приладів та ін.,

б) спеціальну обробку рук хірурга,

в) дотримання особливих правил та прийомів роботи при виробництві операцій, досліджень тощо; г) здійснення спеціальних санітарно-гігієнічних та організаційних заходів у лікувальному закладі.

Метод асептики є подальшим розвитком методу антисептики та тісно пов'язаний з ним (див. Антисептика).

Основоположники асептики – німецькі хірурги Бергманн (E. Bergmann) та Шіммельбуш (C. Schimmelbusch), а в Росії – М. С. Суботін, П. І. Дияконів.

У 1890 році на X Міжнародному конгресі лікарів у Берліні Бергманному було вперше проголошено основний закон асептики: все, що приходить у зіткнення з раною, має бути вільним від бактерій.

Спочатку метод асептики був спрямований на запобігання хворому та персоналу від шкідливої ​​дії антисептичних препаратів (карболова кислота, сулема та ін.). Фізичні чинники, знищуючи мікробів усім, що стикається з раною, дозволяли уникнути безпосереднього на рану токсичних антисептиків.

Надалі з'ясувалося, що одна асептика не в змозі забезпечити профілактику нагноєнь і що необхідне комплексне застосування асептики та антисептики. Створено безліч нових високоактивних антисептичних речовин та препаратів (антибіотики, сульфаніламіди, нітрофуранові сполуки та ін.), що мають менш шкідливий вплив на організм.

З метою забезпечення асептики останніми роками почали використовувати низку фізичних чинників (радіоактивні випромінювання, ультрафіолетові промені, ультразвук та інших.).

Виділяють два джерела хірургічної інфекції: екзогенний та ендогенний. Ендогенне джерело знаходиться в організмі хворого, екзогенне - у навколишньому середовищі.

У попередженні ендогенного інфікування основна роль належить антисептиці, екзогенного інфікування – асептиці.

Екзогенна інфекція поділяється на повітряну, краплинну, контактну, імплантаційну.

Джерелом повітряної інфекціїє мікробні клітини, що у повітрі у зваженому стані. Особливо насичене мікробами повітря міст, закритих приміщень, лікарень.

Боротьба з повітряною інфекцією – це насамперед боротьба з пилом. Основні заходи, спрямовані на зменшення повітряної інфекції, зводяться до наступного:

1) будову правильної вентиляції операційних та перев'язувальних (кондиціювання повітря);

2) обмеження відвідування операційних та скорочення пересування по них персоналу та відвідувачів;

3) захист від статичної електрики, що сприяє розсіюванню пилу;

4) вологе прибирання приміщень;

5) регулярне провітрювання та опромінення приміщення операційною ультрафіолетовими променями;

6) скорочення часу контакту із повітрям відкритої рани.

Крапельна інфекція- різновид повітряної інфекції, коли джерелом інфікування є повітря, забруднене краплинами слини з рота та дихальних шляхів хворого, персоналу або дрібними краплями інших інфікованих рідин. Крапельна інфекція, як правило, найбільш небезпечна для хворого.

Основні заходи, спрямовані на боротьбу з крапельною інфекцією, - заборона розмов в операційній, обов'язкове носіння марлевих масок, що прикривають рот і ніс персоналу, а також своєчасне прибирання операційних.

Контактна інфекція- інфікування рани при зіткненні з нею нестерильних інструментів, інфікованих рук, матеріалів та ін.

Профілактика контактної інфекції полягає у стерилізації всіх приладів, інструментів та матеріалів, що стикаються з раною (див. Стерилізація, в хірургії), та суворому дотриманні правил обробки рук хірурга (див. Обробка рук). Важливе значення надається також оперуванню в рукавичках та виконання більшості маніпуляцій із тканинами за допомогою інструментів, а не рук.

Імплантаційна інфекція- інфекція, що вноситься в рану шовним матеріалом, тампонами, дренажами, протезами тощо.

Профілактика цієї інфекції полягає в ретельній стерилізації шовного матеріалу, дренажів, ендопротезів і т. д. і по можливості більш рідкісному використанні чужорідних тіл, що залишаються в рані (застосування безтампонного методу лікування ран, розсмоктуються шовних матеріалів і т. п.).

Імплантаційна інфекція часто може бути дрімаючою (латентною) і проявити себе лише через тривалий період при ослабленні захисних сил організму.

Особливого значення профілактика імплантаційної інфекції набуває при пересадці органів і тканин, оскільки при застосуванні різних імунодепресорних речовин пригнічуються захисні сили організму, внаслідок чого зазвичай невірулентна сапрофітна мікрофлора стає дуже небезпечною.

Метод асептики для знищення мікроорганізмів та їх суперечка потребує застосування фізичних факторів та хімічних речовин.

З фізичних чинників найчастіше використовують дію високої температури, що викликає денатурацію білків мікробної клітини. Суперечки більшості бактерій більш стійкі до дії високої температури.

Чутливість мікробів до температури залежить від їх виду, штаму та стану мікробної клітини (що діляться і молоді бактерії більш чутливі). Важливе значення має і середовище, в якому знаходяться бактерії (білки, цукор зменшують чутливість, а луги та кислоти збільшують її). Холод затримує розмноження мікробних клітин, не виявляючи вираженої бактерицидної дії.

Виражена бактерицидна дія має ультрафіолетові промені. Від їх дії гинуть мікроби в повітрі, на поверхні тканин, на шкірі живих об'єктів, на стінах та підлозі приміщень тощо.

Останнім часом арсенал асептики поповнився гамма - променями, джерелом яких зазвичай є радіоактивні ізотопи 60 і 137 Cs. Стерилізацію цими променями проводять у спеціальних камерах при дозі 1,5-2 млн. н. Цим методом можна стерилізувати білизну, шовний матеріал, системи для переливання крові та ін.

Ультразвукова стерилізація вимагає потужних генераторів ультразвуку та практичного значення поки що не має.

Рідкі середовища можна звільняти від мікробів і спор, піддаючи їх фільтрації через бактеріальні фільтри, проте вони не затримують вірусів, що фільтруються.

Хімічні речовини, що застосовуються для стерилізації, повинні бути бактерицидними та не псувати інструменти та матеріали, з якими вони стикаються.

Крім традиційних речовин, запозичених з арсеналу антисептики (йод, спирт, хлорамін та ін.), для знезараження приладів, інструментів, матеріалів застосовуються інші речовини (наприклад, діацид).

У профілактиці інфікування ран велике значення мають додаткові заходи: обкладання країв рани стерильними серветками, поетапна зміна інструментів і білизни, повторне миття рук хірургів або зміна рукавичок після «брудних» етапів операції, закриття рани серветками при вимушеній зупинці операції, а також

Останнім часом замість пов'язок іноді для закриття рани застосовують плівкоутворювальні речовини (типу пластуболу), які зазвичай упаковуються в аерозольні балони.

Для забезпечення заходів асептики надзвичайно велике значення мають організаційні заходи. Серед них найбільш важливе правильне планування хірургічних відділень та операційних блоків (див. Операційна , Операційно-перев'язувальний блок), що зменшує небезпеку повітряно-капельної та внутрішньолікарняної інфекції. Для особливо «чистих» операцій (трансплантація органів та тканин) будують «надчисті» операційні та «надчисті» відділення, де досягається високий ступінь ізоляції хворих від персоналу, що стає можливим під час використання моніторних систем для спостереження за хворими (див. Моніторне спостереження).

Важливим заходом із забезпечення асептики є санація обслуговуючого персоналу. Дослідження останніх років показують, що нерідко джерелом хірургічної інфекції є медперсонал, у зіві та носоглотці якого часто знаходиться антибіотикостійка патогенна флора. У випадках, коли санація не дає результатів, доводиться вдаватися до працевлаштування стійких бацилоносіїв поза хірургічними відділеннями.

Бібліографія:Брейдо І. С. Історія антисептики та асептики в Росії, Л., 1956, бібліогр.; Інфекція в хірургії, в кн.: 24 конгр. Міжнародний. о-ви хірургів, під ред. Б. В. Петровського, т. 1, с. 21, М., 1972; Машковський М. Д. Лікарські засоби, ч. 2, с. 436, М., 1972; Стручков В. І. Нариси із загальної та невідкладної хірургії, с. 77, М., 1959; U ade 1 W. Die Aseptik und die Antiseptik in der Chirurgie, кн.: Chirurgie, hrsg. v. M. Kirschner u. O. Nordmann, Bd 1, S. 393, B. - Wien, 1940.

Стручков, Ст А. Сахаров.

Перед будь-якими операційними та перев'язувальними маніпуляціями необхідно проведення заходів щодо усунення та попередження зараження.

Існує два основні види хірургічноїінфекції: ендогенний (або внутрішній) та екзогенний (зовнішній). Як ви вже здогадалися, ендогенна інфекція знаходиться в організмі хворого, тоді як екзогенна інфекція міститься у зовнішньому середовищі: хірургічних інструментах, одязі лікарів, повітрі приміщення. Як ендогенний, і екзогенний види інфекції підлягають усунення. Зовнішні осередки зараження знищуються за допомогою комплексу специфічних заходів, які називаються асептичними. Попередження та усунення внутрішньої інфекції проводиться антисептичними методами.

Асептика

Асептика - це сукупність заходів, спрямованих на запобігання потраплянню патогенних збудників у рану, тканини, органи та порожнини тіла хворого при виконанні хірургічних операцій та діагностичних процедур. Природно, у різний час вимоги до асептичних методик та параметрів умовної стерильності приміщень змінювалися. У той же час донині збереглися два базові принципи асептики:

1. Все, що стосується рани (медичні інструменти) має бути стерильним.

2. Усі хворі хірургічного відділення мають бути поділені на "чистих" та "гнійних".

Головна мета асептичних заходів – це знищення мікробів, а також їх суперечка фізичними та хімічними методами.

Боротьба з повітряною інфекцією

Антисептика

Антисептика – це сукупність лікувально-профілактичних заходів, спрямованих усунення патогенних мікроорганізмів у ранах, інших патологічних утвореннях чи організмі загалом. Розрізняють профілактичну та лікувальну антисептику.

Профілактична антисептика здійснюється для запобігання потраплянню мікроорганізмів у рану або організм хворого (наприклад, обробка місця ін'єкції антисептиком).

Лікувальна антисептика має ряд методик, за допомогою яких вдається знищити популяцію патогенних збудників у рані або в організмі загалом. До поширених методів лікувальної антисептики належать:

• механічні – видалення заражених та омертвілих тканин, видалення чужорідних тіл, розтин затіків, кишень, хірургічна обробка ран та інші маніпуляції;
• фізичні – застосування гігроскопічних пов'язок, тепловий вплив, ультразвук, застосування розчинів із великим осмотичним тиском;
• хімічні – застосування бактерицидних та бактеріостатичних засобів;
• біологічні - застосування антибіотиків, бактеріофагів (вірусів бактерій), ферментів, антитоксинів та інших біологічних агентів у боротьбі з патогенною флорою.

Залежно від того, який саме метод антисептики застосовується, розрізняють місцеву та загальну антисептику. Під місцевою антисептикою розуміють поверхневе застосування дезінфікуючих засобів, наприклад використання присипок, мазей, аплікацій, розчинів. Також місцева антисептика може бути глибокої: ін'єкції знезаражувальних препаратів углиб рани, проведення блокади і так далі.

Загальна антисептика – це насичення організму антисептичними засобами (антибіотиками, сульфаніламідами), які поступово поступають у осередок інфекції і знищують його.

При застосуванні антисептичних засобів лікарю необхідно розуміти, що в деяких випадках вони можуть бути небезпечними для пацієнта, викликаючи ряд побічних ефектів, таких як інтоксикація, алергія,дисбактеріоз, дерматит, кандидоз та інші порушення.